Кокцидиоз у кроликов, содержащихся в домашних условиях с декоративной целью, – явление достаточно редкое. А вот для их собратьев, разводимых для получения мяса и шкурки, заболевание представляет серьезную угрозу. Чем опасен кокцидиоз кроликов Эти животные подвержены многим заразным недугам. Наибольший урон наносят вирусные болезни кроликов. Так, одним из заболеваний, резко снижающих эффективность выращивания животных, считается кокцидиоз (эймериоз). При содержании на подстилке инвазия распространяется очень быстро и поражает все поголовье крольчатника. Существующие препараты обладают достаточной эффективностью, как для лечения, так и для профилактики заболевания, но они весьма дорогостоящи. Переболевшее животное навсегда отстает в росте и развитии. Кроме того, кокцидиоз у кроликов может протекать в скрытой форме и провоцировать снижение сопротивляемости к другим заболеваниям, а также способствовать плохой усвояемости кормов. В результате потребление пищи возрастает, а прирост живой массы остается ниже среднего уровня. Поэтому основой успешного выращивания являются меры, предупреждающие кокцидиоз у кроликов (ведь лечение всегда дороже профилактики). Экономический ущерб от недополучения продукции при вспышке эймериоза огромен. Если рассматривать паразитарные болезни кроликов, кокцидиоз – наиболее опасная инвазия, поскольку характеризуется высоким уровнем заболеваемости, и при отсутствии лечения смертность может достигать 100%. Причины возникновения заболевания Кокцидиоз у кроликов вызывается девятью видами эймерий. Это простейшие одноклеточные организмы, относящиеся к отряду кокцидий. У них сложный цикл развития, благодаря которому паразит обладает огромной воспроизводимостью. Установлено, что одно больное животное ежедневно выделяет во внешнюю среду от 9 до 680 млн. ооцист кокцидий. А из одной ооцисты развивается несколько миллионов эймерий. Другая особенность паразита в том, что каждый вид имеет строгую специфичность. Поэтому, несмотря на то, что кокцидиозом болеют все классы животных, заразиться кролики могут только от кроликов, куры – только от кур, овцы – только от овец и так далее. Сложность лечения и профилактики инвазии в том, что кокцидии распространены повсеместно, и зараженность кроликов эймериями колеблется в пределах 70-100%. Больные и переболевшие животные, взрослые кролики-паразитоносители выделяют споровые формы возбудителя (ооцисты) с калом во внешнюю среду. Уничтожить такую форму возбудителя практически невозможно, так как спора очень устойчива к воздействиям химических и физических факторов. Ооцисты переносятся на подошве обуви, с инвентарем, загрязняют выгульные дворики. Вдобавок, кролики устроены так, что поедание собственного кала является неотъемлемой частью их здорового пищеварения. Ночной помет, выделяемый из слепой кишки (светлые мягкие шарики, покрытые слизью), является источником витаминов группы В, стимулирует иммунитет, поставляет в кишечник необходимую микрофлору. К сожалению, вместе с пометом в организм попадают и яйца кокцидий. Яндекс.Директ Дитрим-лидер среди антибиотиков Удвоенная сила противомикробного действия. Не вызывает резистентности nita-farm.ruАдрес и телефон Есть противопоказания. Посоветуйтесь с врачом. Ниппельные поилки для кроликов Ниппельные поилки и кормушки для кроликов на клетку. Доставка по РФ.Взгляни spasibo5.ru Большое значение в возникновении заболевания имеют плохие условия выращивания молодняка: антисанитария, скученность, повышенная влажность, колебания температуры в помещении, формирование разновозрастных групп животных, недоброкачественный корм, резкая смена рациона. Вспышки кокцидиоза чаще приходятся на весенний и осенний периоды, но могут возникать и в любое время года. Характеристика возбудителя болезни Практическое значение имеют пять видов кокцидий. Четыре из них паразитируют в эпителии тонкого и толстого кишечника: E. perforans, E. media, E. magna, E. irresidua. Пятый вид, E. stiedae, обитает в эпителии желчных протоков печени. В содержимом кишечника или в помете в норме может содержаться незначительное количество ооцист (1-2 в поле зрения). Это не означает наличие заболевания. В некоторых случаях кишечные симптомы могут проявлять и другие вирусные или паразитарные болезни кроликов. Фото, сделанное под большим увеличением микроскопа, позволяет хорошо рассмотреть строение ооцист кокцидии. Они представляют собой овальные или круглые образования размером от 10 до 40 мкм, хорошо обозначена двойная оболочка и темное содержимое (спороциста). На одном суженном конце находится небольшая крышечка (микропиле). Диагноз кокцидиоз у кроликов подтверждают исследованием фекальных масс под микроскопом по методу Дарлинга. Обнаружение единичных ооцист при отсутствии других симптомов заболевания не является основанием для постановки диагноза. Клинические признаки кокцидиоза Данный недуг может протекать в острой, подострой и хронической форме. Наиболее восприимчив к заболеванию молодняк в возрасте от 20 до 60 дней. Часто кокцидиоз проявляется в период отъема крольчат от матери и при переводе их на обычные корма. У животных 3-5 месячного возраста заболевание протекает менее тяжело, а взрослые кролики практически не подвержены болезни, хотя могут быть носителями и провоцировать кокцидиоз. Симптомы проявляются через 4-12 дней после заражения. Теоретически разделяют кишечную, печеночную и смешанную формы кокцидиоза, но на практике инвазия протекает в основном в смешанной форме. Сначала поражается кишечник, вместе с общими признаками недомогания (вялость, отсутствие аппетита) появляется понос, реже запор, брюшко становится вздутым и болезненным, слизистые глаз и ротовой полости бледнеют. Больные животные худеют, отстают в росте, в кале обнаруживается слизь и кровянистые включения. Внешний вид кала помогает диагностировать кокцидиоз и другие паразитарные болезни кроликов. Фото помета при кокцидиозе явно показывает характерные прожилки красного или оранжевого цвета. Часто у заболевших животных наблюдается ринит и конъюнктивит, повышается отделение слюны. С поражением печени проявляется желтушность слизистых оболочек, иногда возникают параличи конечностей и судороги. Брюшко сильно увеличивается в объеме, может развиться асцит (скопление жидкости в брюшной полости). При отсутствии лечения крольчата обычно погибают на 7-10-й день. При вскрытии обнаруживают бледность слизистых оболочек, желтушность, воспаление в кишечнике (стенки утолщенные, содержимое с кровью, слизистая слезает «чулком» или с очагами некроза, отрубевидным налетом). С внешней стороны оболочка кишечной стенки серого цвета, усеяна беловатыми, плотными на ощупь мелкими очажками. В печени ясно видны характерные поражения: по ходу желчных протоков грязно-белые или желтоватые узелки величиной с зерно или даже с горошину, не изолированные от окружающих тканей. В тяжелых случаях поражения затрагивают паренхиму печени. Как отличить кокцидиоз от других заболеваний Кишечные признаки свойственны и другим заболеваниям кроликов. Обнаружение в помете значительного количества ооцист позволяет поставить диагноз кокцидиоз. Симптомы, описанные выше, подтверждают наличие данного заболевания и являются показанием к лечению. Оно проводится под контролем ветеринарного врача, применяются комплексные меры по уничтожению возбудителя в организме, снятию интоксикации и поддержанию электролитного баланса. Поскольку существуют различные болезни кроликов, симптомы и лечение для каждой из них будут различаться. Важно грамотно и своевременно поставить правильный диагноз. В каждом случае необходимо провести дифференциальный анализ, поскольку не всегда присутствуют четкие, характерные симптомы заболевания. Признаки поражения кишечника проявляют следующие болезни кроликов: Кокцидиоз – обнаружение ооцист в помете, кровяные включения, характерный возраст животного. Энтеротоксемия – острое течение, наличие в помете большого количества газов. Возраст 8-30 дней. Обнаружение возбудителя – бактерии C. perfringens. Болезнь Тиззера – острое течение, гибель через 1-2 дня после проявления клинических признаков. Обнаружение в кале возбудителя – бактерии B. piliformis. Гельминтозы – нет крови в помете, хроническое течение заболевания, обнаружение в кале глистов или их яиц. Инфекционные энтериты бактериального происхождения (колибактериоз, дизентерия, энтеробактер, протей) – поражают молодняк в возрасте 6-10 недель. Понос желтого или коричневатого цвета, быстрое обезвоживание, повышенная жажда, понижение или повышение температуры тела. Слизистые оболочки бледные. Наибольшая смертность отмечается в период с 5 по 9 неделю. Кокцидиоз у кроликов: лечение В качестве терапии ветеринарные врачи назначают антибактериальные препараты широкого спектра действия, обладающие, в том числе, и противококцидийным эффектом. Среди них: Сульфаниламиды («Сульфаквиноксалин», «Сульфахлорпиразин») – в корм и питьевую воду. Рекомендованная доза - 0,1 г на 1 кг живого веса. Одновременно назначают «Мономицин» в дозе 25 тыс. ЕД/кг веса. Проводят два пятидневных курса с интервалом в три дня. Нитрофураны («Нитрофуразон»). Дозировка - 1-1,5 г на 1 кг живой массы. В рацион включают кисломолочные продукты: молочную сыворотку в дозе 25-30 мл на голову, простоквашу, АБК. Не всегда антибактериальные препараты могут вылечить кокцидиоз. Лечение в запущенных случаях проводят с применением лекарств узконаправленного действия – кокцидиостатиков. Кокцидиостатики в кролиководстве Такие препараты обладают определенной токсичностью и достаточно дороги в производстве, но отличаются прекрасным лечебным и профилактическим эффектом. В терапевтических целях целесообразно применять их с водой, а для профилактики их подмешивают в премиксы и дают с кормом. При постановке диагноза кокцидиоз лечение проводят одним из следующих препаратов (по действующему веществу): Диклазурил («Соликокс», «Диакокс»). Ампролиум («Бровитакокцид», «Кокцидиовит»). Тотлазурил («Байкокс», «Кокципродин», «Стоп-кокцид»). Дозировки лекарства зависят от концентрации вида действующего вещества. В среднем жидкую форму кокцидиостатика производят в 2,5-5% концентрации и дают животным с водой из расчета 10 мг ДВ на 1 кг живого веса 2-3 дня подряд. В профилактических целях дозу снижают в два раза, а курс проводят немного дольше. В составе премикса кокцидиостатики вводят в корм в дозе 0,1% и скармливают в критические периоды (смена корма, перевод в другое помещение, отъем крольчат). Готовые смеси можно приобрести на рынке комбикормов и в ветеринарных аптеках. В любом случае внимательно ознакомьтесь с инструкцией и уточните, можно ли использовать препарат именно для кроликов. Если поголовье животных маленькое, и обнаружен кокцидиоз у кроликов, лечение проводят путем индивидуальной дачи лекарства. Его вводят в ротовую полость, используя шприц без иглы. Кролики (фото, приведенное в статье, демонстрирует, как правильно зафиксировать голову) кладутся на стол, спину прижимают, не давая животному отбиваться задними лапами. Жидкость аккуратно вводят в уголок рта за губу. Не давайте более 1 мл жидкости за один прием. Профилактика кокцидиоза у кроликов Особое внимание уделяют правильной организации технологии выращивания. Заболеваемость напрямую зависит от того, в каких условиях содержится декоративный кролик. Прививки не всегда спасают даже от вирусных болезней. Основным способом предупреждения недугов является соблюдение зоогигиенических требований. Профилактика такого заболевания, как кокцидиоз у кроликов, осуществляется с помощью следующих мер: Содержание животных на решетчатых полах. Недопущение скученности, соблюдение норм посадки (не менее 0,5 м.кв. на одно животное). Содержание животных в сухих, хорошо проветриваемых помещениях. Соблюдение температурного режима (кролики плохо переносят температуру выше 20°С). Размещение клеток на открытом воздухе или обеспечение их вентиляцией не менее 3 м.куб. на 1 кг живого веса в час. Проведение ежедневной уборки помета из клеток и смены подстилки. Очищение один раз в день кормушки и поилки и ошпаривание их кипятком. Существуют ли вакцины для кроликов? Конечно, если у вас в квартире содержится один декоративный кролик, прививки делать не нужно. А вот для тех, кто разводит кроликов ради хлеба насущного, вопрос весьма актуален. Есть ли прививка от кокцидиоза? Вакцины от кокцидиоза для кроликов на сегодняшний день не существует. Хотя не исключено, что при возрастании спроса такой препарат будет изобретен. Ведь ученым удалось создать вакцину от кокцидиоза у кур, отвечающую современным потребностям производителей куриного мяса. В настоящее время профилактика кокцидиоза у кроликов сводится к общим мерам по предупреждению инфекционных и инвазионных заболеваний, а также к профилактической даче кокцидиостатических препаратов. Иммунитет у переболевших кроликов остается на всю жизнь, животные невосприимчивы к повторному заражению. Иммунитет нестерильный, что означает пожизненное носительство возбудителя в организме. Такой кролик легко может заразить не болевшую ранее особь при возникновении сопутствующих факторов (стресс и так далее). Условия, провоцирующие заболевание Часто кокцидиоз у кроликов возникает после прививок от ВГБ и миксоматоза. Это не означает низкого качества вакцины, а свидетельствует о скрытом течении кокцидиоза в стаде. Примите меры по профилактике заболевания за неделю до вакцинации, и вы избежите осложнений. При выгуле на траве периодически передвигайте клетку, чтобы избежать накоплений патогенных организмов в одном месте. Кормление должно быть полноценным, с содержанием 15% грубых волокон и 20% белковых веществ. Обязательно присутствие в рационе сена, даже если животные получают полноценный комбикорм. Также необходим постоянный доступ к воде, несмотря на то, что кролики получают значительную часть жидкости из травы. Соблюдение условий кормления и содержания позволит избежать такого неприятного недуга, как кокцидиоз. Если все же по каким-либо причинам произошла вспышка заболевания, то при быстрой постановке диагноза и применении эффективных лекарственных препаратов прогноз благоприятный. Не забывайте изолировать заболевших животных и провести в клетках уборку с применением дезинфицирующих средств. По возможности ошпарьте кипятком все доступные места, а металлические поверхности и инвентарь обожгите открытым пламенем с помощью газовой горелки или паяльной лампы. - Читайте подробнее на FB.ru: http://fb.ru/article/164063/koktsidioz-u-krolikov-lechenie-simptomyi-profilaktika-priznaki-bolezni

Оглавление

1.     Определение болезни……………………….…....3

2.     Экономические потери………..………………....3

3.     Характеристика возбудителя……..…………… 4

4.     Восприимчивые животные…………..………… 7

5.     Локализация возбудителя…………….…………8

6.     Жизненный цикл возбудителя………..…………9

7.     Эпизоотологические данные……….…..……...11

8.     Патогенез и иммунитет…………..………..…...12

9.     Течение и симптомы болезни……….…………13

10.  Патологоанатомические изменения..….… …...14

11.  Диагностика…………………………….….…... 15

12.  Дифференциальная диагностика……....….…...16

13.  Лечение……………………………………..….. 17

14.  Исход....………………………………….………18

15.  Профилактика………………………….….…….19

16.  Выводы и рекомендации………………..……. 20

17.  Список использованной литературы….…........21

1.     Определение болезни.

Эймериозы —инвазионные заболевания животных и человека, вызываемые одноклеточными простейшими классаSроrоzоа, которое характеризуется повреждением кишечника и сопровождается поносами, истощением и падежом животных. Наиболее часто болеют молодые животные, у взрослых болезнь протекает, в большинстве случаев, без выраженных клинических признаков.

Эймериоз кроликов (Eimeriosis cuniculi)- остро, подостро и хронически протекающая болезнь, вызываемая одноклеточными простейшими отрядаCoccidia, болезнь характеризуется повреждением кишечника и печени, анемичностью, иногда желтушностью слизистых оболочек, быстрым исхуданием, увеличением объема живота, диареей, судорогами и нередко массовой гибелью животных. Это одно из самых распространенных заболеваний кроликов, встречающееся во всех хозяйствах.

2.     Экономические потери.

Эймериоз у кроликов является одним из самых распространенных заболеваний. При данном заболевании происходит повреждение кишечника и печени. Эймериозом могут болеть как взрослые так и молодые особи, но чаще молодняк до 4-5 месячного возраста, а гибель у них, может, доходит до 85-100%. Кролиководческие хозяйства несут значительные экономические потери которые включают в себя: затраты на лечение, профилактику, дезинфекцию. На почве этого заболевания кролики значительно отстают в развитии, снижается прирост живой массы, ухудшается качество продукции.

3.     Характеристика возбудителя.

Возбудители эймериоза паразитируют в эпителиальных клетках тонкого и толстого кишечника, вызывая кишечную форму болезни, один из видов локализуется в эпителиальных клетках желчных протоков, вызывая печеночную форму, но чаще всего встречается смешанная форма этого заболевания, которая сопровождается повреждением кишечника и печени. Часто эймериоз протекает одновременно с пастереллезом. В результате почти все животные гибнут.

В настоящее время описано 10 видов эймерий. В Республике Беларусь из них найдено 8 видов. Сейчас в нашей стране наиболее часто встречаются 3 вида: E. stiedae, E. perforans, E. magna. Самым патогенным видом является E. stiedae, локализующаяся в желчных протоках печени.

тип: Apicomplexa

класс: Sporozoa

отряд: Coccidia

семейство: Eimeriidae

подсемейство Eimeriinae

род: Eimeria

вид: E. stiedae

E. perforans

E. magna

E. intestinalis

E. media

E. irresidua

E. piriformis

E.coecicola

Рис.1.Эймерии кроликов.

E. stiedae

Ооциста овальной формы, желто-коричневого цвета с гладкой, двухслойной оболочкой. На суженом конце ооцисты имеется микропиле, но оболочка вокруг нее не утолщена. Зародышевая масса округлой формы, крупнозернистая. Величина ооцист 30,6 +0,475x16,81+0,216 мкм. Споруляция длится 72-96 часов. Спороцисты продолговатой формы, остаточные тела имеются в ооцисте и в спороцистах. Локализуется в эпителии желчных протоков. Это один из самых патогенных видов эймерий роликов. Встречается в Республике Беларусь.

E. perforans

Ооцисты этого вида имеютовальную, цилиндрическую или почти круглую форму. Оболочка гладкая, двухслойная. У мелких ооцист микропиле незаметно. У крупных микропиле окружено двухслойной утолщенной оболочкой. Зародышевая масса расположена в центре ооцисты, крупнозернистая. Ооцисты желтоватого цвета, имеют остаточное тело.

Величина 4,50 +0,659x13,40+0,238 мкм. Продолжительность спорогонии 24 – 48 часов. Спороцисты продолговатые, имеют остаточное тело. Локализуются в тонком отделе кишечника.

E.magna

Ооцисты овальной формы, с двухслойной, гладкой оболочкой желто-коричневого или коричневого цвета. Имеется широкое, хорошо заметное микропиле, вокруг которого наружная оболочка утолщена в виде валика. Зародышевая масса крупнозернистая, располагается ближе к толстому концу ооцисты. Величина ооцисты 32,44 +1,426x19,72+0,864 мкм. Споруляция продолжается 72-108 часов. Спороцисты овальной формы. В ооцисте и в спороцистах имеются остаточные тела. Локализуется в тонком отделе кишечника.E.magnaсчитается одной из самых патогенных эймерий кроликов, однако в Республике Беларусь встречается сравнительно редко, интенсивность инвазии низкая.

E.intestinalis

Ооциты этого вида характеризуются эллипсовидной или овальной формой, светло-коричневого или желтого цвета. Оболочка двухслойная, гладкая. На суженном конце ооцисты имеется хорошо выраженное микропиле. Зародышевая масса крупнозернистая, сдвинута к более толстому концу ооцисты. Величина ооцисты 28,4+0,96x17,92+0,238 мкм. Споруляция продолжается 48-72 часа. Спороцисты овальной формы, суженные к одному концу. Остаточное тело имеется в ооцисте и в спороцистах. Локализуется в тонком и тостом отделах кишечника.E.Intestinalisимеет значительное распространение в Республике Беларусь

E.media

Ооцисты этого вида овальные, желто-коричневого цвета с двухслойной, гладкой оболочкой. Микропиле располагается на суженном конце ооцисты. Оболочка вокруг микропиле утолщена. Зародышевая масса мелкозернистая, располагается ближе к толстому концу ооцисты.

Величина ооцисты 27,38+1,199x18,92+0,594 мкм. Споруляция продолжается 48-84 часа. В ооцисте и спороцистах имеются остаточные тела. Локализуется в тонком отделе кишечника. В Республике Беларусь этот вид эймерий встречается довольно часто.

E.irresidua

Ооцисты овальной или эллипсовидной формы. Оболочка двухслойная, тонкая, гладкая. Цвет ооцисты светло- или темно-коричневый. Имеется микропиле, которое расположено на более широком конце ооцисты. Остаточного тела нет. Величина ооцисты 35,26+1,469x20,17+0,853 мкм. Спорогония длится от 72 до 84 часов. Спороцисты овальной формы с остаточными телами. Локализуется в тонком отделе кишечника.E.irresiduaявляется распространенным видом эймерий кроликов в Республике Беларусь.

E.piriformis

Ооцисты этого вида яйцевидной формы, желто-коричневого цвета. Оболочка гладкая, двухслойная, утолщена в сторону микропиле, которое располагается на более узком конце ооцисты. Зародышевая масса зернистая, находится ближе к толстому концу ооцисты. Величина ооцисты 29,04+0,669x17,42+0,248 мкм. Споруляция продолжается 72-96 часов. Остаточное тело ооцисты отсутствует. Спороцисты овальной формы, имеются остаточные тела. Локализуется в толстом отделе кишечника. В Республике Беларусь этот вид эймерий встречается очень редко.

E.coecicola

Ооцисты цилиндрической или овальной формы, желтого или светло-коричневого цвета. Оболочка гладкая, двухслойная, утолщенная вокруг хорошо выраженного микропиле. Зародышевая масса сдвинута к более толстому концу ооцисты. Величина ооцисты 32,07+0,929x17,49+0,626 мкм. Споруляция продолжается 72-84 часа. Спороцисты овальные, остаточные тела имеются как в ооцисте, так и в спороцисте. Локализуется в тонком и толстом отделах кишечника. В Республике Беларусь встречается редко.

4.     Восприимчивые животные.

Эймериозом могут болеть как взрослые, так и молодые особи, но чаще – молодняк до 4-5 месячного возраста.

У взрослых животных болезнь протекает значительно легче, чем у молодняка. Наиболее тяжело переносят болезнь крольчата в возрасте 20-65 дней. Крольчата с 8-дневниго возраста уже могут быть инвазированы эймериями, но пока они питаются молоком матери клинические признаки у них почти не выражаются.

5.     Локализация возбудителя.

Возбудители эймериоза паразитируют в эпителиальных клетках тонкого и толстого кишечника, вызывая кишечную форму заболевания. Один из видов локализуется в эпителиальных клетках желчных протоков, вызывая печеночную форму эймериоза. Чаще всего встречается смешанная форма, сопровождающаяся повреждениями кишечника и печени.

E.perforans,E.magna,E.media,E.irresidua- локализуются в тонком отделе кишечника.

E.piriformis- локализуется в толстом отделе кишечника.

E.intestinalis,E.coecicola- локализуются в тонком и тостом отделах кишечника.

E.stiedae- локализуется в эпителии желчных протоков.

Рис 2.Шизонты, микрогаметоциты, макрогамета, зигота и мерозоиты в подслизистом слое слизистой оболочки кишечника.

6. Жизненный цикл возбудителя.

Возбудитель имеет 3 стадии развития: мерогония, гаметогония, спорогония. Причем стадии мерогонии и гаметогонии происходят в эпителии кишечника (E.stiedae– в желчных протоках печени, аE.perforans- толстом кишечнике). А третья стадия происходит во внешней среде. Стадия мерогонии – это бесполое размножение, которое сопровождается образованием мерозоитов; гаметогонии - половой процесс, формируются ооцисты; спорогонии - образуются спорозоиты.

В ооцисте, которая вышла из организма естественным путем (с фекалиями) и при благоприятных условиях, происходит стадия спорогонии. При этом цитоплазма ооцисты уплотняется, принимая форму шара, и делится на 4 споробласта, в последствии вокруг которых образуется оболочка и они становятся спороцистами. Далее каждая спороциста делится на 2 спорозоита. Этот процесс длится от нескольких часов до нескольких суток. Ооциста с 8 спорозоитами считается инвазионными. Из таких ооцист, съеденных кроликами, в просвет кишечника выходят спорозоиты и проникают внутрь эпителиальных клеток кишечника. Внутри клетки спорозоит множественно делится, образуя многоядерную клетку - меронт. Внутри меронта формируются удлиненной формы мерозоит. После образования мерозоитов, меронт распадается. Мерозоиты вновь проникают в здоровые эпителиальные клетки и формируются меронты второй генерации, затем третей. Бывает до 4-5 генераций. Мерозоиты последней генерации проникают в здоровые клетки и дают начало микро - и макрогаметоцитам. Микрогаметоциты путем многократного деления ядра образуют множество микрогамет с 2-3 жгутиками. Макрогаметоциты превращаются в крупные неподвижные женские особи – макрогаметы. Микрогаметы активно проникают в макрогаметы и образуют зиготы, которая покрывается оболочкой и становится ооцистой.

Рис. 3Схема строения ооцисты подсемействаEimeriinae:/ — микропиле; 2 — внутренняя часть ооцисты; 3 — оболочка ооцисты; 4 — cпороциста; 5—остаточное тело в ооцисте; 6 — шнейдеровское тело; 7 — остаточное тело в спороцисте; 8 — спорозоит

Рис 4.Ооцисты эймерий.

Рис 4.Цикл развития Eimeria media в кишечнике (А) и во внешней среде (Б):

1 - спорозоит; 2-4 - развитие шизонтов первой и последующих генераций; 5 - мерозоиты трех генераций; 6 - развитие микрогаметы и 6а - макрогаметы; 7 - микрогаметы; 8 - зигота (ооциста); 9 - ооциста неспорулированная, вышедшая из организма кролика; 10-12 - спорогония

1.     Эпизоотологические данные

Эймериоз кроликов встречается во всех странах мира. В Беларуси регистрируется повсеместно. Большинство взрослых кроликов являются носителями ооцист, в том числе и крольчихи. Уже с 8- дневного возраста маленькие крольчата могут быть инвазированы эймериями. При этом интенсивность инвазии находится в прямой зависимости от зараженности кормящих крольчих. Наибольшая инвазированность кроликов наблюдается поздней весной и осенью. В зимнее время ооцисты развиваются только на теле маток, поэтому у крольчат количество эймерий небольшое. Источником инвазии являются кормящие крольчихи, носители эймерий, а также больные или переболевшие кролики. Ооцисты могут распространятся обслуживающим персоналом на обуви, одежде, предметах ухода. Интенсивность заражения молодняка находится в прямой зависимости от степени заражения крольчих. На интенсивность инвазии влияют скученное содержание, резкие колебания температуры, сырость, недоброкачественные корма, наличие других заболеваний, особенно инфекционных.

Значительную роль в распространении эймериоза играют мыши, крысы, мухи и другие животные. В их кишечнике ооцисты не разрушаются, а проходят транзитом, сохраняя способности к дальнейшему развитию и заражению специфических хозяев. Болеют эймериозом все породы кроликов. Наиболее восприимчивы к эймериозу крольчата 20-65- дневного возраста. Могут болеть и старшие животные. Но болезнь у них протекает менее тяжело.

В данном случае причиной распространения заболевания явилось плохое содержание животного и несвоевременное проведение профилактических мероприятий. Несвоевременно проводится дезинсекция помещения. В помещении где содержится кролик, содержатся птица, что также повлияло на возникновение и распространение заболевания.

2.     Патогенез и иммунитет.

Развитее болезни начинается с проникновения спорозоитов в эпителиальные клетки кишечника. Из-за мерогонии происходит массовое разрушение клеток эпителия. Об интенсивности развития заболевания можно судить по количеству выделенных ооцист во внешнюю среду. У больного животного ежедневно выделяется 6-680 млн. ооцист. Через поврежденную стенку кишечника может проникнуть патогенная микрофлора, что усугубит процесс.

В крови уменьшается количество эритроцитов, гемоглобина, увеличение числа эозинофилов, содержание сахара и снижается резервная щелочность. У больных кроликов резко снижается естественная резистентность, особенно уменьшается фагоцитарная активность лейкоцитов, бактерицидная активность сыворотки крови, количество лизоцима. Нарушается водный баланс, повышается вязкость крови. Изменяется белковый состав крови, снижается количество альбуминов, увеличивается содержание α -, β - и γ - глобулинов. Снижается активность фасфатазы в тонком кишечнике, нарушается процесс всасывания аминокислот, все это в совокупности ведет к задержке роста и развития организма.

Патогенез свидетельствует о глубоких нарушениях в организме в целом, а не только в органе, где локализуется возбудитель.

Переболевшие кролики имеют нестерильный иммунитет, и они становятся невосприимчивыми к повторному заражению теми видами возбудителей, которые вызывали первичное заболевание.

3.     Течение и симптомы болезни.

Инкубационный период заболевания продолжается 4-10 дней. Заболевания проявляется остро, подостро или хронически. Условно эймериоз кроликов подразделяется на кишечную, печеночную и смешанную формы. Но в хозяйствах эймериоз протекает в виде смешанной формы, так как у большинства кроликов паразитирует одновременно эймерии, повреждающие кишечник и печень.

В первые дни у больных животных наблюдается вялость, угнетение, они становятся малоподвижными, больше лежат на животе, аппетит снижается, брюшко увеличивается в размерах, при пальпации болезненная, слизистые оболочки бледные. Наблюдается понос, нередко с примесью крови, полиурия. Больные животные отстают в росте и развитии, худеют. Они не реагируют на внешние раздражители. Появляется желтушность слизистых оболочек, могут появляться параличи конечностей, судороги, чаще всего перед смертью животных. Самки плохо оплодотворяются, дают малочисленные (по 2-3 крольчонка) и нежизнеспособные пометы. Выздоровевшие кролики долгое время выделяют ооцисты.

При подостром течении клинические признаки менее выражены. У кроликов с хроническим эймериозом наблюдаются истощение, тусклый и взлохмаченный шерстный покров.

У курируемого животного наблюдалось: снижение аппетита, угнетенное состояние, конъюнктива глаз анемичная, умеренно влажная, слизистые оболочки ротовой и носовой полостей анемичны, умеренно влажные, наблюдается незначительное покраснение половых органов, небольшое увеличение объема живота, при его пальпации – болезненность, брюшная стенка была напряжена, наблюдалось частое мочеотделение и диарея, фекалии полужидкие. Животное больше лежит на животе, температура, пульс, дыхание в пределах физиологической нормы.

Морфологические признаки проб крови при первом исследовании показали резкое увеличение количества эозинофилов и снижение уровня гемоглобина и эритроцитов. При повторном исследовании, в конце курации, показатели крови были в пределах физиологической нормы.

При исследовании фекалий по методу Дарлинга в первый день курации в поле зрения микроскопа было обнаружено 40 ооцист эймерий, через день – в поле зрения микроскопа было обнаружено 15 ооцист эймерий. В конце курации, после проведенного курса лечения раствором «Торукокс 2,5%» (Solutio«Torucocxum2,5%»), в поле зрения микроскопа ооцист эймерий не обнаружено.

При первичном исследование мочи кролика в начале курации отмечалось изменение цвета и прозрачности. При вторичном исследовании показатели нормализовались до состояния физиологической нормы.

4.     Патологоанатомическиеизменения.

Трупы животных истощены, слизистые оболочки анемичные и желтушные. Задняя часть трупа загрязнена. Изменения наблюдаются и в кишечнике (очаговое или диффузное воспаление слизистой оболочки, оно может быть катаральным или геморрагическим) и в печени. Нередко выявляются белые тяжи в стенке кишечника. На его внутренней поверхности может быть творожистый экссудат. При паразитировании у кроликов E.stiedae, то наиболее характерные изменения наблюдаются в печени: она увеличена в размере, на поверхности ее видны беловатые, изолированные очаги, расположенные по ходу желчных проходов. Их величина может достигать размеров горошины. Если исследовать эти очажки, то можно найти ооцисты эймерий. У таких кроликов атрофируются дольки печени, уменьшается ее объем.

Неистощенные тушки вынужденно убитых животных используются без ограничения, истощенные проверяются на сальмонеллез – при отрицательном результате реализуются.

Патологоанатомический диагноз:

1.     Острый геморрагический дуоденит.

2.     Серозное воспаление брыжеечных лимфоузлов.

3.     Острая венозная гиперемия печени, почек, легких, слизистой оболочки ротовой полости.

4.     Рыхло свернувшаяся кровь в полостях сердца.

5.     Истощение, эксикоз.

Рис 6.Двенадцатиперстная кишка животного, павшего от эймериоза. Острый геморрагический дуоденит.

5.     Диагностика.

При диагностике эймериоза у кроликов нужно иметь в виду, что среди кроликов широко распространено эймерионосительство., особенно среди взрослых кроликов, по этому при постановке прижизненного диагноза на эймериоз кроликов учитывают данные анамнестических, эпизоотологических, клинических и лабораторных исследований.

Фекалии больных животных исследуют с помощью методов Дарлинга, Фюллеборна, Котельникова и Хренова. С помощью них выявляют ооцисты паразитов. У павших кроликов исследуют этими же методами соскобы со слизистой кишечника, желчных протоков, их содержимое. При наличии белых узелков их вырезают, раздавливают на стекле и рассматривают под микроскопом при малом и среднем увеличении. У больных эймериозом кроликов при исследовании фекалий, содержимого кишечника, желчных протоков, белых узелков на печени находят большое количество ооцист эймерий.

В данном случае диагноз на эймериоз был поставлен комплексно, учитывались анамнестические, эпизоотологические, клинические признаки, микроскопическое исследования фекалий методом Дарлинга.

Мы проводили исследование по методу Дарлинга: брали 3 - 5г свежих фекалий, поместили их в фарфоровую ступку, растирали фекалии в ступке пестиком до получения однородной взвеси с десятикратным количеством водопроводной воды. Получившуюся массу пропустили через один слой марли в баночку Флоренского и дали отстоятся 5мин. После надосадочную жидкость слили, а осадок поместили в центрифужную пробирку и центрифугировали в течение 2мин при 1500 об/мин, затем с центрифужной пробирки слили надосадочную жидкость, а к осадку долили жидкость Дарлинга (равные части глицерина и насыщенного раствора поваренной соли). Чистой стеклянной палочкой размешали смесь и повторно центрифугировали 2мин при 1500 об/мин. Далее гельминтологической петлей с поверхности жидкости сняли 3-4 капли и поместили их на обезжиренное предметное стекло, накрыли покровным стеклом и микроскопировали.

При исследовании фекалий по методу Дарлинга в первый день курации в поле зрения микроскопа было обнаружено 40 ооцист эймерий, через день – в поле зрения микроскопа было обнаружено 15 ооцист эймерий и в предпоследний день – в поле зрения микроскопа было обнаружено 3 ооцисты эймерий. В конце курации, после проведенного курса лечения раствором «Торукокс 2,5%» (Solutio«Torucocxum2,5%»), в поле зрения микроскопа ооцист эймерий не обнаружено.

Температура, пульс, дыхание, гематологические показатели в пределах физиологической нормы. Общее состояние кролика удовлетворительное, корм и воду принимает охотно. Из полученных результатов можно сделать вывод, что кролик является носителем ооцист эймерий.

6.     Дифференциальная диагностика.

При постановке диагноза эймериоз кролика, следует исключить псевдотуберкулез, туберкулез, пастереллез, колибактериоз и листериоз.

Возбудитель псевдотуберкулеза вызывает заражение кроликов через органы дыхания, пищеварительный тракт и при половом контакте, а при эймериозе – только алиментарное. К псевдотуберкулезу воспреимчевы не только кролики, но и морские свинки, мыши, голуби, обезьяны. При псевдотуберкулезе отмечается септический процесс, увеличение лимфоузлов, чего не бывает при эймериозе. Патологоанатомические изменения при псевдотуберкулезе – милиарные и нодулярные инкапсулированные слоистые казеозные узелки без петрификации в брыжеечных, бронхиальных и средостенных лимфоузлах, нодулярные и нодозные гнойно-некротические очаги в легких, печени, селезенке и пиелонефрит. Патологоанатомические изменения более резко выражены в селезенке, почках и лимфоузлах, а при эймериозе – в тонком кишечнике и в желчных протоках печени.

При пастереллезе заражение происходит респираторным путем. Ринит, затрудненное дыхание. Патологоанатомические изменения локализуются в органах брюшной и грудной полостях, наблюдаются общие септические изменения, лобарная крупозная пневмония, серозно-фибринозный плеврит и перикардит, очаги некроза в печени и почках, истощение.

При листериозе заражение происходит при скармливании животным инфицированных кормов, инфекцию могут передавать иксодовые клещи, блохи, вши. Наблюдается катарально-геморрагический ринит, гнойный конъюктивит и кератит, кровоизлияния в слизистой оболочке трахеи и бронхов, в плевре, эпи- и эндокарде. Увеличение селезенки и милиарные некрозы в ней, серозное воспаление лимфоузлов, зернистая дистрофия печени и милиарные некрозы в ней, острый катаральный гастроэнтерит.

При туберкулезе при вскрытии обнаруживают ацидозные, ацидозно-нодозные, лобулярные узелки с казеозным некрозом в легких, лобарная казеозная пневмония, бугорковый лимфоденит бронхиальных и средостенных лимфоузлов, милиарные и нодулярные узелки с казеозным некрозом в печени, селезенке. Бугорковый плеврит.

При колибактериозе - катаральное или геморрагическое воспаление желудка и тонкого кишечника, может быть картина сепсиса. Также наблюдается острая катаральная или геморрагическая пневмония, эксикоз, общая анемия, истощение.

13. Лечение.

В борьбе с эймериозом кроликов большое значение имеет применение лекарственных средств и хорошие условия кормления и содержания. При возникновении единичных случаев заболевания больных кроликов отделяют от здоровых и назначают им препараты с лечебной целью, а остальным – с профилактической. При заболевании большого количества животных противоэймериозные средства дают всем животным. Хороший эффект дает применение раствора йода: самкам с 25-го дня беременности по 5 день лактации по 100 мл 0,1 % раствора, затем до 40 дня лактации - по 200-300мл, молодняку после отъема – по 50-70 мл 0,2% раствора 15-дневным курсом. Раствор йода готовят перед применением, но его нельзя готовить в металлической посуде или разливать в металлические поилки.

Употребляют также и другие лекарства. Норсульфазол натрияпо 0,4 г/кг массы в виде 0,5-1,0%-го раствора вместо питьевой воды по 2 раза в день.Сульфадиметоксинназначают с влажным кормом по 0,2 г/кг массы в первый день, а в последующие 4 дня - по 0,1 г/кг массы.Фталазол- по 0,1 г/кг массы 2 раза в день с кормом.Сульфадимезин – 0,04 – 0,05 г/кг массы 2 раза в день 5-дневны курсом. Можно применятьсульфапиридазин ( 0,1 г/кг массы ) илинорсульфазол натрия( 0,4 г/кг массы ) в сочетании смономицином( 25 тыс. единиц активно – действующего вещества на 1 кг массы ). Из других препаратов применяютФуразолидон -0,03 г/кг 7-10 дневными курсами 1-2 раза в день.Химкокцид-7дают по 0,2 – 0,3 г/кг массы тела внутрь с кормом,трихопол0,015 – 0,020 г/кг.Нифулин илибиофузол применяют по 5 г/кг корма 7 – дневным курсом.Торукокс – применяют с питьевой водой трех дневным курсом, в дозе: 1мл раствора «Торукокс 2,5%» на 1 литр воды.

Для лечения курируемого животного применяли препарат «Торукокс 2,5%» (Solutio«Torucocxum2,5%») в дозе 0,1 мл раствора на 1 литр питьевой воды двух-трех дневным курсом.

Rp.: Solutio Torucocxis 2,5% - 0,1ml

D.S. Внутреннее. Развести в 1 литре воды. Выпаивать в течение 2-х дней.

Характеристика используемых препаратов:

«Торукокс 2,5%» (Solutio«Torucocxum2,5%») препарат из группы эймериостатиков, производных триазинона. Представляет собой прозрачную жидкость, светло – коричневого цвета, специфического запаха, хорошо смешивающуюся с водой.

http://www.studfiles.ru/preview/1155092

Очень распространенным заболеванием среди домашних кроликов является эймериоз. Это заболевание вызывается группой простейших рода Eimeria. Известно свыше 15 видов у кроликов, в нашей стране зарегистрировано 12 видов. Обычно происходит заражение сразу несколькими видами эймерий.

Патогенез и клиническая картина при эймериозе кроликов

Почти все виды этих простейших 

поражают слизистую оболочку кишечника, только один вид паразитирует в желчных ходах печени.
Ооцисты эймерий выделяются вместе с фекалиями здоровых и переболевших животных. При поедании корма с примесью каловых масс происходит алиментарное заражение здоровых кроликов эймериями. Кокцидии начинают делиться, образуя обширные колонии, поражаю большие участки кишечника. Нарушается всасывание питательных веществ и трофика их к тканям.
Это приводит к следующим изменениям:

·      выделение водянистых экскрементов;

·      примесь слизи и крови в каловых массах;

·      истощение животного;

·      общая вялость;

·      вздутие живота – образование и задержка газов в кишечнике;

·      повышение температуры;

·      анемия слизистых, либо иктеричность при поражении печени;

Наиболее активно болезнь проявляется у молодняка, среди которого смертность достигает 85 – 100% в отсутствии лечения. Взрослые кролики менее подвержены болезни – у них возникает устойчивость, но при перевозке животного в новые условия, где имеются другие штаммы эймерий, могут наблюдаться новые эпизоды болезни.

Патологоанатомическая диагностика

Наиболее доступным способом постановки диагноза на Эймероз является паразитологическое вскрытие. В ходе вскрытия можно обнаружить патологоанатомические изменения во внутренних органах:

·      кишечник гиперемирован;

·      наблюдается вздутие кишечника и образование жидких фекалий;

·      на печени имеются белые узелки;

Подтвердить диагноз можно микроскопическим исследованием фекалий, либо содержимого узелков на печени. При этом обнаруживаются ооцисты эймерий. 

Лечение эймериоза

Предотвратить массовый падеж можно проведением своевременного лечения. Существует множество специальных препаратов против эймериоза кроликов. 
Препараты для лечения эймериоза:

·      Фуразолидон – 0,03 г/кг массы 7-10-дневными курсами 1-2 раза в день;

·      Норсульфазол натрия по 0,4 г/кг массы в виде 0,5-1%-ного раствора вместо питьевой воды по 2 раза в день;

·      Нифулин или биофузол применяют в дозе 5 г/кг корма 7-дневным курсом;

·      Химкокцид-7 применяют по 0,2-0,3 г/кг массы тела внутрь с кормом;

·      салиномицин – по 0,034-0,05 г/кг массы»

·      Сульфадиметоксин назначают с влажным кормом по 0,2 г/кг массы в первый день, а в последующие 4 дня – по 0,1 г/кг массы

·      Дитрим, из расчета 1 мл на 1л воды в течение 5 дней

Профилактика эймериоза кроликов

Для профилактики эймериоза кроликов требуется раздельное содержание животных различных возрастных групп.
Ежедневная уборка фекалий с целью предупреждения повторного заражения.
Содержание кроликов на решетчатых полах.
Ежемесячная дезинфекция клеток хлорной известью, едким натром или другими дезинфицирующими растворами.
Применять эймериостатики с одновременной дачей загрязненных ооцистами эймерий фекалий кроликов, для формирования у последних иммунитета к данным видам паразитов.
Всех вновь купленных кроликов необходимо обследовать – клинически, но лучше лабораторная диагностика. Применить курс профилактического лечения эймериоза одним из препаратов из раздела «лечение».
Фекалии кроликов должны подвергаться биотермическому обеззараживанию.

Эймериоз (кокцидиоз) кроликов

Возбудители эймериоза (кокцидиоза) кроликов - восемь видов кокцидий из сем. Eimeriidae, из которых наиболее распространены и патогенны Eimeria perforans, Eimeria magna, Eimeria stiedae (рис. 74).

Морфология возбудителей. Eimeria perforans паразитирует в тонком кишечнике. Ооцисты средней величины, овальной формы, серого цвета, без микропиле; в ооцисте имеется остаточное тело.

Eimeria magna локализуется в кишечнике. Ооцисты крупные, яйцевидной формы, желтовато-оранжевого цвета, с резко выраженным микропиле; остаточные тела расположены в ооцисте (одно) и в спороцистах (рис. 75).

Eimeria stiedae развивается в эпителии желчных ходов печени. Ооцисты крупные, эллипсоидной формы, желтовато-розового цвета, с широким микропиле; остаточные тела находятся только в спороцистах.

Эпизоотологические данные. Эймериоз - бич кролиководства. Наиболее восприимчивы к эймериозу крольчата, тяжело переболевающие в период отъема от матерей. При клиническом выздоровлении кролики длительный период остаются эймерионосителями; нередко заражаются повторно ввиду отсутствия иммунитета. В темных, влажных помещениях приспособленного типа поражается до 100% кроликов.

Клинические признаки. По течению болезни различают острую (от 3 до 20 дней) и хроническую (1-3 месяца) формы, а по локализации эймерий - кишечную, печеночную и смешанную. Инкубационный период равен 4-12 дням. У больных кроликов отмечается потеря аппетита, угнетение, вздутие брюшка, частое мочеиспускание (полиурия), исхудание и судороги. При печеночной форме - желтушность слизистых оболочек и болезненность печени (при прощупывании).

Патологоморфологические изменения. При вскрытии трупов кроликов, павших от эймериоза, основные изменения обнаруживают в тонком кишечнике (покраснение и утолщение слизистой оболочки, кровоизлияния и язвочки на ней, наличие газа и слизи в просвете) и печени (увеличение в размере и наличие беловато-желтых очажков разной величины). Слизистая желчного пузыря катарально воспалена.

Диагноз при жизни ставят на основании исследования фекалий по методу Фюллеборна, а посмертно - при вскрытии трупов.

Лечение. Больным кроликам назначают: норсульфазол натрия в дозе 0,3-0,4 на 1 кг веса животного в виде 0,5-1%-ного раствора в течение 4-5 дней подряд вместо питьевой воды; водно-молочный раствор йода: 50 мл 2%-ного водного раствора йода смешивают с 250 мл молока и подогревают на легком огне, затем к 300 мл полученной смеси добавляют 1800 мл воды и выпаивают кроликам в течение 7-14 дней (по 250 мл на животное); пенициллин назначают в дозе 12-15 тыс. ЕД или биомицин - 5-8 тыс. ЕД на голову с кормом или в виде питья 4-5 дней подряд; фурациллин - 1 г препарата растворяют в 5 л горячей воды и задают внутрь в дозе 20-30 мл на кролика; уротропин применяют в дозе 0,2 на 1 кг веса животного с водой. В рацион кроликам вводят корма, богатые углеводами, которые угнетают жизнедеятельность гнилостных микробов, снижают концентрацию водородных ионов и тормозят развитие кокцидий.

Профилактика. Для предупреждения заражения кроликов эймериозом целесообразно их содержать в клетках с сетчатым полом, кормушки и поилки помещать вне клеток, охранять корма и воду от загрязнения фекалиями кроликов, крольчат после отъема постепенно переводить на обычный рацион, периодически дезинвазировать инвентарь и клетки через 5-10 дней огнем паяльной лампы или через 7-10 дней крутым кипятком, поддерживать санитарный порядок на кроликоферме, навоз обеззараживать биотермическим методом в навозохранилищах, закреплять инвентарь за группой животных, уничтожать механических переносчиков эймерий (крыс, мышей и мух), обеспечивать кроликов полноценными кормами.

http://www.spec-kniga.ru/zhivotnovodstvo/veterinarnaya-parazitologiya/kokcidiozy-ehjmerioz-krolikov.html

Большую актуальность в ветеринарии представляет такое заболевания, как эймериоз кроликов, который поражает грызунов в возрасте преимущественно до 4-5 мес. возраста. Но не исключается заболевание и кроликов более старших возрастов при определенных неблагоприятных условиях кормления и содержания. При возникновении эймериоза летом патология проявляется поносами или запорами. Первыми признаки также могут быть: ринит и конъюнктивит, анарексия и анемия.

Этиология

Существует 9 видов возбудителей эймериоза, из которых чаще встречаются 5 видов - E.stiedae,E.perforans,E.media,E.magna,E.irresidua. Разницей между ними является тот факт, что все виды эймерий паразитируют в клетках кишечника, нарушая тем самым процесс пищеварения и всасывания, а только 1 вид – E. Stiedae - в желчных протоках печени.

Шизогония, гаметогония и спорогония являются тремя стадиями жизни эймерий. Превращения спорозоитов в трофозоиты – характеризуют бесполое развитие шизогонии. Образовние мерозоитов, а затем шизонтов второй генерации с вовлечением эпителиальных клеток кишечника - это шизонты первой генерации. Бесполое размножение и сам половой процесс – это гематогония. А такой процесс, как спорогония сопровождается слиянием гематоцитов, образованием четырех спороцистов, которые при становлении зрелыми, заражают других животных

Заболевание весьма широко распространена повсеместно. Носительство эймерий кроликами может составлять 100% от поголовья. Источниками паразита становятся животные с клиническими формами болезни, активно выделяющие во внешнюю среду с фекалиями ооцисты, взрослые кролики часто являются паразитоносителями. Также источником заражения могут стать загрязненные ооцистами помещения, клетки, корма, вода, предметы ухода, выгульные дворики. Нередко ооцисты эймерий могут быть занесены в крольчатники с обувью людей, а также крысами, мышами, птицами.

Важное значение в распространении заболевания имеет скученное напольное содержание молодняка с легким доступом к подстилке и фекалиям сородичей. Такие зоогигиенические факторы, как сырость в крольчатниках и резкие колебания температуры, неправильное комплектование групп животных, включение в них крольчат разного возраста и развития, недоброкачественность кормов и резкая их смена, а также и другие факторы, снижающие резистентность организма. Чаще всего вспышки заболевания чаще всего бывают весной и осенью, а при неблагоприятных условиях кормления и содержания кроликов — в любое время года.

Клинические признаки эймериоза кроликов

Инкубационный период длится относительно недолго и составляет 4-12 дней. Болезнь часто подразделяют на кишечную, печеночную и смешанные формы. Чаще всего кокцидиоз протекает в смешанной форме.

По истечении инкубационного периода у крольчат появляется вялость, они теряют обычную подвижность, больше лежат. Аппетит снижается или отсутствует полностью. Брюшко вздутое и болезненное, наружные слизистые оболочки бледные. Появляется понос, испражнения жидкие, со слизью и нередко кровянистые. У молодняка болезнь проявляется задержкой в росте, животные вообще перестают развиваться. Худеют, волосяной покров у них становится тусклым и взъерошенным. Из-за общей интоксикации может наблюдаться выделение слюны, появляется насморк и конъюнктивит. С развитием воспалительных процессов в печени организм слабеет, кролики становятся апатичными к окружающему. В более поздних стадиях увеличивается живот, при пальпации с правой стороны животные реагируют болезненно. Появляется желтушность слизистых оболочек из-за поражения печени, параличи конечностей и шейных мышц, а также судороги; крольчата погибают на 7—10 день. Клинически эймериоз наиболее часто проявляется у кроликов в период отъема их от матерей и перевода на обычные корма, когда стресс максимальный. Нередко кокцидиоз протекает хронически, в таких случаях симптоматика более размытая, но, тем не менее, шансы летального исхода такие же.

Патологоанатомические изменения

Трупы крольчат истощены. Видимые слизистые оболочки анемичны, а иногда и желтушны. Кровеносные сосуды стенок кишечника переполнены кровью. Слизистая оболочка двенадцатиперстной и слепой кишок утолщена и отечна и воспалена. Иногда эта форма воспаления переходит в геморрагическое и тогда в просвете кишечника будет кровь. Такие поражения могут быть очаговыми или диффузными.

При хроническом течении слизистая тонкого кишечника и слепого отростка серого цвета, усеяна беловатыми, плотными на ощупь узелками, заполненными эймериями.

При тенденции к поражению печени она увеличивается в несколько раз и перерождена. На поверхности можно заметить желто-белые пятна. Желчные протоки расширены, стенки их утолщены.

Диагностика эймериоза кроликов

Диагноз ставят комплексно, на основании эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных, а также микроскопических исследований фекальных масс по методу Дарлинга.

Ооцисты имеют овальную или эллипсовидную форму, оболочка гладкая, на суженом конце имеется микропиле. Размер цист от 13,3—47,8 х 10,6—27,9 мкм. Споруляция от 2 до 5 дней. Внутри спорулированных ооцист имеется 4 спороцисты, в каждой по 2 полулунных спорозоита.

Лечение эймериоза кроликов

Больных животных изолируют, помещают в клетки с сетчатыми полами. В рацион включают высококачественное сено, корнеклубнеплоды.

Для лечение применяют сульфаниламидные препараты — фталазол в дозе 0,1 г/кг веса; сульфадимезин в дозе 0,2 г/кг; сульфадиметоксин и сульфапиридазин в дозе 100 мг на 1 массы тела; сульфадиметоксин в той же дозе + мономицин в дозе 25 тыс. е.д./кг — два раза в день двумя пятидневными курсами с интервалом в 3 дня. Также метронидазол в виде инъекций или через ром в дозе 0,1 мл/ 1 кг в/м дважды с интервалом 48 часов или в виде порошка (трихопол) 2 раза в день в дозе 20мг/кг в течение недели.

Химкокцид в дозе 30 мг/кг 2 раза в день 5 дней подряд, при необходимости курс повторяют через 3 дня.

В мерах профилактики важное значение имеет строгое соблюдение ветеринарно-санитарных норм. Кроликов содержат в клетках с решетчатыми полами в сухих, хорошо вентилируемых помещениях или на свежем воздухе. Необходимо ежедневно очищать клетки и менять подстилку, один раз в сутки ошпаривают крутым кипятком кормушки и поилки. Для дезинвазии можно использовать прожигание газовой горелкой или паяльной лампой.

Большое значение имеет также полноценное кормление самок в период кормления крольчат и самих крольчат после отъема.

В наиболее важный период отъема молодняка от матерей назначают комплексную химиопрофилактику, которая заключается в дачи сульфадиметоксина в дозе 100 мг/кг с мономицином 25000 е.д./кг в течение 5 дней; выпаивание 0,5%-ного раствора норсульфазола. Эти меры уменьшают количество паразитов в кишечнике и замедляют его развития, предупреждая тем самым, переход патологии в клиническую форму.

Кроме того, рекомендована периодическая замена питьевой воды следующими растворами: слабый (бледно-розовый раствор марганцовокислого калия); слабый раствор йода (2—3 капли на 100 мл). http://www.allvet.ru/diseases/rabbit_parasit2.php

Эймериоз кроликов (возбудители, эпизоотология, патогенез, терапия и профилактика)

ВАК РФ 03.00.19, Паразитология

Авторефератдиссертации по теме "Эймериоз кроликов (возбудители, эпизоотология, патогенез, терапия и профилактика)"

БЕЛОРУССКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ВЕТЕРИНАРИИ ИМ. С.Н.ВЫШЕЛЕССКОГО

УДК 619:616.993.192.1:636.4

МЕДВЕДСКАЯ ТАМАРА ВЯЧЕСЛАВОВНА

ЭЙ МЕРИ03 КРОЛИКОВ (возбудители, эпизоотология, патогенез, терапия и профилактика)

03.00.19> паразитология, гельминтология

АВТОРЕФЕРАТ ДИССЕРТАЦИИ на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Минск -1998

Работа выполнена в Витебской государственной академии ветеринар! медицины.

Научный руководитель - доктор ветеринарных наук, профессор А.И.Ятусевич.

Официальные оппоненты: Заслуженный деятель науки БССР, дою

ветеринарных наук, професо

И.С.Жариков,

кандидат биологических не

К.М.Кириенко

Оппонирующая организация- Московская государственная академ ветеринарной медицины и биотехнологии им.К.И.Скрябина.

Защита диссертации состоится нсЛёрА 1998 года в часов заседании совета по защите диссертаций Д 05.16.01 в Белорусском научи исследовательском институте экспериментальной ветеринарии и С.Н.Вышелесского (223020, г.Минск, п/о Кунцевщина, ул.Вышелесского. Тел. 988-353).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Белорусского научн исследовательского института экспериментальной ветеринарии и С.Н.Вышелесского.

Автореферат разослан « С^К^Лс^рЛ__1998 года.

Ученый секретарь совета по защите диссертаций, доктор ветеринарных наук профессор

В.Я.Линник

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Важнейшей задачей сельского хозяйства является дальнейшее увеличение производства продуктов животноводства. Это может быть достигнуто за счет интенсивного развития всех его отраслей, в том числе и такой, как кролиководство. Оно играет важную роль в продовольственном снабжении населения и успешно развивается как в крупных так и фермерских хозяйствах.

Увеличению поголовья и повышению продуктивности животных часто препятствуют различные паразитарные болезни, среди которых особое место занимают эймериозы.

Данные отечественных и зарубежных исследователей свидетельствуют о широком распространении эймериозов во многих природно-климатических зонах. Возбудители этой болезни выявлены у большинства видов млекопитающих и птиц (Ь.РеПегсИ, 1965, 1974; А.Ф.Манжос, 1979; РХог^, М-Яоге, 1983; Т. В. Арнастаускене, 1985; В.Ф.Абрамова, Н.В.Караре, 1985; А.ИЛтусевич, 1973-1998; А.А. Головащенко, 1995; В.А. Лочкарев, 1995;. И.И.Вершгшин, 1996 и др.).

С развитием крупных кролиководческих хозяйств на промышленной основе в условиях высокой концентрации поголовья животных на относительно небольших площадях эймериоз является одной из наиболее распространенных болезней у кроликов, нанося огромный экономический ущерб. Гибель молодняка от этой болезни достигает 85-100%, больные животные отстают в росте и теряют от 12 до 30% своей массы (Е.М.Хейсин, 1967; КА.Колабский, П.И.Пашкин, 1974; А.ИЛтусевич с соавт., 1993).

Многие исследователи (Е.А.Литвенкова с соавт., 1972; Н.А.Холабский, 1973-1982; А.Ф.Манжос, 1975; А.Н.Пономаренко, 1980; В.Ф.Абрамова, 1985; Т.В.Арнастаускене, 1985; Л.И.Иргашева, 1985; А.ИЛтусевич с соавт":, 19821998) разрабатывали терапию этих болезней. Испытаны самые разнообразные лекарственные вещества. Однако поиск новых терапевтических средств необходим и сейчас в связи с быстрой адаптацией эймерий к применяемым лекарственным препаратам.

Не изучен видовой состав возбудителей эймериоза кроликов в хозяйствах Республики Беларусь. Нет данных о влиянии эймерий на состояние естественной резистентности и иммунную реактивность. Сложный механизм взаимодействия эймерий с организмом кролика не может быть выяснен без всестороннего изучения биохимических изменений в крови животных. В связи с быстрой адаптацией эймерий к применяемым лечебно-профилактическим средствам актуальной остается проблема изыскания эффективных лечебных препаратов.

Связь работы с крупными научными программами, темами. Тема настоящей работы является частью комплексной Республиканской научно-

технической программы (1990-1995г.г.) «Разработать и внедрить комплексы: системы получения и выращивания здорового молодняка в Белорусской СС 01.9.10 (№ госрегистрации 036738).

Цель и задачи исследования. Целью наших исследований являе! изыскание эффективных средств терапии и профилактики при эймерис кроликов. В связи с этим перед нами были поставлены следующие задачи:

- изучить видовой состав эймерий кроликов в различных типах хозяй< распространение эймериоза, его возрастную и сезонную динамику, услог способствующие заражению животных;

- при экспериментальном заражении выяснить состояние естествен] резистентности и иммунной реактивности у больных кроликов, a Tai некоторые вопросы патогенеза при эймериозе;

- изучить эффективность ряда препаратов для борьбы с эймериозом и влияние на организм кроликов;

- определить экономическую эффективность испытанных противоэймериоз! препаратов.

Объект и предмет исследования. Основным объектом исследова] были кролики хозяйств Республики Беларусь. Материалами для выявле] зараженности кроликов эймериями служили фекалии животных из различь хозяйств республики. При исследовании гематологических показате. проведено 1250 анализов. В опытах использовано более 3 тысяч кроли различных половозрастных групп. Изучены противоэймериозные свойс салиномицина, трихопола, настоя пижмы, хвойной муки, лизоцима Г лизосубтилина Г10х и средство для дезинвазии внешней среды.

Методология и методы проведенных исследований. Для реше: поставленных задач по- изучению, лечению и профилактике эймери кроликов необходимо было использовать паразитологичесь иммунологические, биохимические и физико-химические мете исследований. Изучение экспериментального эймериоза проводили кроликах 40-50-дневного возраста. Отмывание ооцист проводилось пу многократного осаждения их в водопроводной воде центрифугирован и Изучение гематологических показателей проводили с использован! следующих методик: количество лейкоцитов - подсчетом в камере Горя< содержание гемоглобина и эритроцитов - на ФЭК по Г.В.Дервиз и А. Воробьевой (1959). Бактерицидную активность сыворотки крови - по метод О.В.Смирновой и Т.А.Кузьминой (1966) в модификации Ю.М.Маркова и (1968) с кишечной палочкой. Активность лизоцима в сыворотке крови изуч по методу В. Г. Дорофейчука (1968). В качестве тест-культуры использов Micrococcus lysodeiticus. Опсоно-фагоцитарную активность нейтрофи определяли по В.С.Гостеву (1950) (С.И.Плященко, В.Т.Сидоров, 1979). качестве тест-объекта использовали суточную культуру белого стафилоко! Оценку фагоцитоза проводили по показателям фагоцитарной активно

нейтрофилов, фагоцитарному числу, фагоцитарному индексу и фагоцитарной емкости крови. Количество сиаловых кислот определяли методом Гесса (Е.А.Васильева, 1982). Белковые фракции - методом электрофореза на агаровом геле. Концентрацию глюкозы, холестерина и витамина С определяли спектрофотометрически (П.Т.Лебедев, А.Т.Усович, 1979). Расчет экономической эффективности проводили согласно "Методике определения экономической эффективности ветеринарных мероприятий", утвержденной ГУВ МСХ СССР 4 мая 1982 г.

Цифровые данные обработаны статистически по Р.Б.Стрелкову (1966), критерий достоверности определяли по таблице Стьюдента.

Научная новизна и значимость полученных результатов. В

кролиководческих хозяйствах Республики Беларусь изучен видовой состав и выделено 8 видов возбудителей эймериоза, из них 3 вида зарегистрированы впервые, уточнены их морфологические и биологические характеристики. Впервые изучены состояние естественной резистентности организма кроликов при эймериозе (повышение бактерицидной активности сыворотки крови на 9,7-20,3%, уменьшение активности лизс^цима на1,3-2,1%), установлена динамика содержания в крови животных глюкозы, холестерина, витамина С.

Предложены новые эффективные препараты трихопол, салиномицин, настой пижмы обыкновенной, хвойная мука для лечения, лизоцим ГЗх и лизосубтилин ГЮх для профилактики эймериоза кроликов и дезонол для дезинвазии объектов внешней среды.

Практическая и экономическая значимость полученных результатов. Полученные данные по влиянию эймерий на состояние естественной резистентности и иммунную реактивность организма кроликов послужили теоретической базой для разработки этиотропной и патогенетической терапии. Предложено 7 лекарственных препаратов для лечения и профилактики эймериоза, которые с комплексом других мероприятий вошли в следующие научно-практические разработки:

1. Дополнение к "Наставлению по применению лизола санитарного марки "дезонол" для ветеринарных целей", утверждено ГУВ Госагропрома СССР 22 августа 1987 г.

2. Рекомендации по борьбе с эймериозами и изоспорозами животных. Утверждены секцией паразитологии отделения ветеринарной медицины Российской с/х академии 8 декабря 1992 г.,( протокол №4).

3. Фитотерапия при паразитозах животных (учебно-методическое пособие). Одобрено учебно-методическим советом ФПК Витебского ветинститута 23 декабря 1992 г., г. Витебск, 1993 г.

4. Применение лекарственных и кормовых растений при паразитарных болезнях животных (рекомендации). Утверждены научно-техническим

Советом МСХ и продовольствия Республики Беларусь 22 июля 1993 года протокол №5.

5. Рекомендации по применению пижмы обыкновенной (Tanacetum vulgare" при паразитозах животных. Утверждены ветотделом Витебского областногс комитета по сельскому хозяйству и продовольствию 7 июня 1995 г.

Экономический эффект разработанного нами метод; химиопрофилактики эймериоза кроликов путем применения изучении? препаратов в составе комбикорма составляет 1,8-10,3 руб. прибыли на каждьи затраченный рубль.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

- результаты исследований по изучению возбудителей эймериоза, особенносте{ эпизоотологии болезни в кролиководческих хозяйствах Республики Беларусь позволяющие разработать комплекс мероприятий по борьбе с ней;

материалы по изучению естественной резистентности, иммунно? реактивности и некоторых биохимических показателей крови кроликов npi эймериозе, дающие возможность подбора наиболее эффективных препарате! для лечения и профилактики этой болезни;

лечебная и экономическая эффективность препаратов для борьбы < эймериозом кроликов, что позволит хозяйствам применять для борьбы с это{ болезнью наиболее доступные и экономически выгодные средства.

Личный вклад соискателя. Автором самостоятельно выполнены вс< научные исследования. Часть работ, опубликованных в соавторстве, носи-; комплексный характер.Соавторы работ оказывали научно-методическук помощь при организации и проведении опытов.

Апробация результатов диссертации. Материалы исследованш доложены: на итоговых научных конференциях профессорско преподавательского состава Витебского ветинститута в1989-98гг.. республиканской научно-производственной конференции "Профилактика i меры борьбы с болезнями молодняка с/х животных" (Витебск, 1990), V съезд« протозоологов (Витебск, 1992).

Опубликованность результатов. По теме диссертации опубликовано 1; научных работ общим объемом 146 страниц (из них 45 лично автором), в ton числе 2 статьи в журналах, 1- в материалах съезда, 3 тезиса, 4 рекомендацш для сельскохозяйственного производства, одно учебно-методическое пособие i один информационный листок.

Структура и объём диссертации. Диссертация изложена на 11" страницах машинописного текста и состоит из следующих разделов: введение обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результата! исследований, выводы и предложения производству, содержит 24 таблицы, 1: рисунков. Список литературы включает 233 наименования, из них 55 иностранных авторов.

РЕЗУЛЬ ТА ТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

ВИДОВОЙ СОСТАВ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ И ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ЭЙМЕРИОЗА КРОЛИКОВ.

Видовой состав эймерий кроликов в хозяйствах Республики Беларусь. Материал по фауне эймерий кроликов собирался нами в течение 7 лет. В результате проведенных исследований в 6 хозяйствах Республики Беларусь нами установлены следующие виды паразитов, относящиеся к роду Eimeria:

1. E.perforans (Leuckart, 1879)

2. E.intestinalis ( Cheissin, 1948)

3. E.irresidua (Kessel et Sankiewies, 1931)

4. E.media (Kessel, 1929)

5. E.magna (Perard , 1925)

6. E.stiedae (Lindemann, 1865)

7. E.coecicola ( Cheissin , 1947)

8. E.piriformis (Kotlan and Pespesch , 1934)

Наиболее распространенным видом является E.perforans. Этот вид паразита установлен в 100% случаев, он зарегистрирован во всех возрастных группах кроликов.

По степени распространения на втором месте находятся E.intestinalis, E.irresidua, затем E.media и E.magna. Другие виды эймерий регистрируются очень редко.

У крольчат до 2- месячного возраста доминируют эймерии вида E.perforans , а у 3- месячных -E.perforans и E.intestinalis. Эти же виды чаще встречаются и у кроликов до 5-месячного возраста. У 6-месячных крольчат и взрослых животных, кроме этих видов, часто встречается и E.irresidua . У крольчих мы не обнаружили E.coecicola и E.stiedae, а у взрослых кролей -Е. stiedae.

Изучая материалы различных регионов Республики Беларусь, существенных отличий в фауне эймерий в хозяйствах южной, северной, восточной и западной частей республики мы не обнаружили.

Возрастная динамика. С целью изучения распространения эймериоза нами произведены паразитологические исследования в 6 кролиководческих хозяйствах во всех областях республики, виварии академии и ряде хозяйств индивидуального сектора, обследовано более 3 тысяч животных различных возрастов. Среди всех возрастных групп наиболее неблагополучными по эймериозу являются крольчата 1-3-месячного возраста. Интенсивность инвазии у животных этого возраста в зависимости от хозяйства, в котором их выращивают, находилась в пределах 56,0±6,02 - 323,7±23,6 тыс. ооцист эймерий в 1г фекалий. Высокое содержание ооцист эймерий (51,0±6,02 - 190,8+19,77 тыс./г) обнаружено у крольчат до месячного возраста. Первое выделение ооцист эймерий у молодняка этой группы нами отмечено в 9-дневном возрасте.

С возрастом кроликов интенсивность эймериозной инвазии постепенно снижалась. Однако в некоторых хозяйствах (колхоз "Межаны" Витебской области, с-з "Щучинский" Гродненской области) в 3-4-мес. возрасте она была довольно высокой, соответственно 215,5±19,55 и 186,0±18,80 тыс. ооцист эймерий в 1г фекалий. Нами также отмечено резкое снижение эймериозной инвазии у животных в 4-6-месячном возрасте.

Анализируя возрастную динамику эймериозной инвазии среди взрослых крольчих и кролей, установлено, что они имеют незначительное количество ооцист (за исключением кролематок с-за "Щучинский"). При этом в большинстве случаев кролематки выделяют больше ооцист по сравнению с взрослыми кроликами-самцами. Наиболее интенсивной инвазия была в к-зе "Межаны" Витебской области и с-зе "Щучинский" Гродненской области, наименьшая - в с-зе "Калинковичский" Гомельской области. В целом зараженность эймериями в различных зонах республики существенно не отличается.

Сезонная динамика эймериоза кроликов. Изучение сезонности эймериозной инвазии кроликов мы проводили в двух хозяйствах с различным содержанием животных: в открытых шедах круглый год (с-з "Белорусский" Минской области) и отапливаемом капитальном помещении (виварий Витебского ветеринарного института).

Результаты исследований показали, что пик инвазии в с-зе "Белорусский" Минской области приходится на летний период, а наиболее инвазированными в это время были крольчата 31-90-дневного возраста. Более низкая инвазия отмечена у крольчат до 30-дневного и 91-120-дневного возраста. Значительно ниже инвазированы крольчата 121-180-дневного возраста и взрослое поголовье. В осенний период эймериозная инвазия регистрировалась в пределах 167,6-52,5 тыс./г фекалий ооцист эймерий. При этом нами отмечена наибольшая инвазированность крольчат 30-60-дневного возраста. В зимний период наблюдалось снижение интенсивности эймериозной инвазии у кроликов всех возрастных групп. Низкая зараженность животных в зимний

период обусловливается низкой температурой воздуха, которая является неблагоприятной для споруляции ооцист.

Изменения в видовом составе эймерий в зависимости от сезона незначительны. В обоих случаях круглый год наиболее распространенными видами были Е. регАзгапя, Е. ¡гге51<1иа.

В весенний период, при наступлении тепла, эймериозная инвазия снова возрастала. Однако и в этот сезон наибольшая инвазированность отмечена у крольчат до 30-дневного возраста (113,2 ±9,70 тыс./г) и 30-90-дневного возраста (135,8+24,73 тыс./г).

Результаты изучения сезонной динамики эймериозной инвазии в виварии Витебской академии ветеринарной медицины показали, что она во все периоды года изменялась незначительно. Так, у крольчат до 30-дневного возраста по сезонам года она составляла 207,4±26,82 зимой и 231,0+28,75 тыс./г - летом. У крольчат до 90-дневного возраста -от 202,3±72,08 до 225,3±14,80 тыс./г. Аналогичные изменения отмечены и у животных старших возрастов. В отличие от кроликов, которые содержались в открытых шедах, у животных, находящихся в отапливаемых помещениях, пик инвазии приходился на крольчат до 30-дневного возраста.

Механизм передачи возбудителя инвазии. Одним из этапов изучения данного вопроса явилось выяснение влияния кормящих крольчих на инвазированность крольчат эймериями.

Для этого в виварии Витебского ветеринарного института было подобрано две группы " сукрольных крольчих с различной степенью инвазированности. За ними вели наблюдение в течение всего подсосного периода, до отьема крольчат. В это время регулярно исследовали крольчих и крольчат копроскопическим методом.

Наблюдения за крольчихами 1 группы, имеющими высокую интенсивность инвазии, показали, что инвазированность крольчат из гнезда довольно высокая. К концу подсосного периода она составила 181,.5±13,21 тыс./г фекалий, а у крольчих - 34,1±2,74 тыс./г. У крольчих II группы, имевших перед окролом сравнительно низкую интенсивность инвазии (8,5±0,39 тыс./г), крольчата инвазировались в течение подсосного периода значительно меньше (49,8+0,32 тыс./г).

Изучая степень зягрязнения эймериями объектов внешней среды, установлено, что смывы с 1 дм* пола содержали 35,0-38,7, с кормушек - 18,022,6, поилок - 11,3-21,0 и стенок клеток - 7,1-11,3 ооцист.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ ЭЙМЕРИОЗ КРОЛИКОВ.

Для изучения экспериментального эймериоза было взято 28 крольчат, которых по принципу аналогов разделили на 4 группы, по 7 голов в каждой. I группа была контрольной, а II, III и IV - опытными. Кроликов II группы инвазировали 20 тыс. спорулированных ооцист эймерий, III - 30 тыс. и IV - 50 тыс. ооцист.

Первые симптомы болезни появились у инвазированных животных на 45 день после их заражения. У кроликов опытных групп, по сравнению с контрольными, отмечалось учащение пульса, ухудшение аппетита, общее угнетение, истощение и высокая смертность. Степень выраженности этих симптомов была неодинаковой и зависела от дозы введения ооцист. Наиболее тяжело протекало заболевание у животных III и IV групп, получавших более высокие дозы ооцист эймерий.

Анализ паразитарной реакции показал, что первое выделение ооцист начинается с 5 дня, интенсивное - с 6 дня. При этом в IV группе, где животные были инвазированы большей дозой спорулированных ооцист, количество выделяемых ооцист эймерий было значительно" больше. Интенсивность инва" ш с каждым днем все возрастата и достигала наивысшего значения на 12 день.

У подопытных животных развивается анемия Так, во второй группе в крови было на 15,5 г/л, в III - на 27,5 и в IV - на 28,5 г/л гемоглобина меньше, чем у контрольных. Содержание эритроцитов снизилось соответственно на

I,45 (Р>0,05); 1,84(Р>0,05); 2,67х10пл (Р<0,05).

Как показали наш» исследования, наиболее существенные изменения в содержании общего белка установлено уже на седьмой день болезни. Так, у кроликов II группы содержание его было больше, чем в контрольной группе, на 5,58 г/л (Р<0,05), а в III группы - на 1,9 г/л. Эта тенденция наблюдалась и на 12 день и лишь на 17 день болезни содержание общего белка в сыворотке крови у кроликов всех групп существенно не отличалось. Однако у зараженных животных этот показатель был всеже несколько выше. На 22 день после заражения отмечено достоверное увеличение (Р<0,05) общего белка сыворотки крови у больных животных по сравнению с контрольными.

Перед постановкой на опыт (перед заражением) количество иммуноглобулинов находилось в пределах 51,00±3,56 - 57,50±1,40 г/л. На третий день после заражения отмечено достоверное увеличение (Р<0,01) этого показателя у кроликов III группы, инвазированных 30 тыс. ооцист.

Результаты изучения лизоцимной активности сыворотки крови показали, что перед заражением этот показатель находился на уровне 10,05±1,54 •

II,90±0,39% без достоверной разницы между группами. На третий день после

-------------- .T.«T.^tTryv 0/.BV тЛ7ПП

однако у кроликов III группы это снижение было более заметным (8,84±0,40% против 9,15+0,34% у контрольных животных).

На седьмой день после заражения активность лизоцима возросла и достигла уровня 11,10+1,12 - 11,75±0,03% и была примерно одинаковой у животных всех групп.

При анализе бактерицидной активности сыворотки крови установлено, что уровень ее перед заражением находился в пределах 60,08+3,23 -63,16+1,86% На третий день после заражения отмечено увеличение бактерицидной активности у всех больных животных. Так, кролики II группы превосходили по этому показателю контрольных на 10,46% (Р<0,05), III - на 7,12 (Р<0,05) и IV группы - на 16,35% (Р<0,05). На седьмой день после заражения в первых двух группах бактерицидная активность была примерно одинаковой, а у животных III группы отмечено достоверное (Р<0,05) увеличение на 15,81% по сравнению с контрольной группой. На 12 и 17 день болезни у животных II группы установлена достоверная (Р<0,05) разница по этому показателю крови. И лишь на 22 день после заражения, когда практически перестали выделяться ооцисты эймерий, бактерицидная активность сыворотки крови стала почт"и одинаковой у контрольных и опытных животных.

До заражения количество глюкозы в крови находилось в пределах 4,0794,842 ммоль/л и отличалось незначительно. На третий день после заражения достоверных различий по концентрации глюкозы в крови не отмечено, уровень ее оставался 4,232-4,675 ммоль/л. На седьмой день установлено увеличение содержания глюкозы в крови зараженных кроликов (5,355+0,015 ммоль/л).

На 12-22. день после заражения этот показатель был примерно одинаковым у животных обеих групп.

Изучение концентрации сиаловых кислот показало, что на 7 день болезни резко увеличивается их концентрация (23,40+1,12 ед. опт. пл.) по сравнению с контрольными животными (Р<0,001).

ИЗЫСКАНИЕ СРЕДСТВ ТЕРАПИИ И ПРОФИЛАКТИКИ

Эффективность применения трихопола (метранндазола).

Изучение противоэймериозных свойств трихопола мы проводили в виварии Витебского ветинститута на 30 спонтанно зараженных кроликах 5-месячного возраста, разделенных на 2 подопытные и контрольную группы и в зверохозяйстве "Щучинский" Гродненской области. Интенсивность эймериозной инвазии перед началом опыта у кроликов подопытных групп составляла от 20,6 до 24,3 тыс. ооцист эймерий в 1г фекалий. Кроликам опытных групп назначали трихопол в дозе 15-20 мг/кг массы 2 раза в день. Как показали результаты опыта, в первые три дня лечения значительных изменений

в динамике эймериозной инвазии не наблюдалось. Однако уже на 4 день у животных II и III групп интенсивность инвазии снизилась соответственно до 44,2±6,1 и 9,5+2,6 ооцист. В то же время у кроликов контрольной группы в 1 г фекалий находилось 204,7±4,4 ооцист эймерий. На 5 день исследований у животных III группы эймериозная инвазия практически отсутствовала, низкая она была и во второй группе. Дальнейшее наблюдение показало, что количество ооцист у кроликов III группы не увеличивалось, во II группе оставалось на прежнем уровне (единичные). У животных контрольной группы на протяжении всего периода исследований отмечена интенсивная эймериозная инвазия (174,7±4,5 - 221,0±13,3 тыс. ооцист в 1г фекалий). В контрольной группе пало 4 кролика, в опытных - по одному.

При применении трихопола активизируется гемопоэз, улучшается углеводный обмен. Изучив иммунобиологические показатели крови кроликов, мы установили, что гуморальные факторы защиты наиболее выражено проявляются у животных, получавших этот препарат. Производственный опыт, проведенный в зверохозяйстве "ЕЦучинский" Гродненской области, полностью подтвердил полученные результаты. Проведенными копроскопическими исследованиями нами установлена 100% шГвазированность кроликов эймериями в данном хозяйстве. Для проведения опыта было подобрано 250 кроликов 2-4-месячного возраста. 120 животных находились в контроле. Трихопол применяли в дозе 20 мгкг массы шестидневным курсом 2 раза в день с кормом. Проведенные копроскопические исследования после шестидневного скармливания препарата показали полное отсутствие инвазии у кроликов опытной группы. У животных контрольной группы интенсивность инвазии практически не изменилась. Падежа животных не наблюдали.

Эффективность применения салиномицина.

Опыт проведен в клинике кафедры паразитологии Витебского ветинститута на 40 кроликах 3-месячного возраста, разделенных на 4 группы по 10 голов в каждой, спонтанно инвазированных эймериями. Кролики первой группы были контрольными, животным второй группы с кормом назначали 6% премикс салиномицина в дозе 17 мг на кг массы (1 мг АДВ), третьей - 34 мг /кг (2 мг АДВ) и четвертой - 51 мг (3 мг АДВ). Препарат применяли с концентрированными кормами 2 раза в день.

Результаты опыта показали, что интенсивность эймериозной инвазии перед началом опыта находилась в пределах 118,0-130,0 тыс. ооцист в 1 г фекалий. На пятый день после применения препарата нами отмечено резкое снижение инвазии. На девятый день исследований у животных III и IV групп произошло полное освобождение от ооцист эймерий.

Дальнейшее наблюдение подтвердило, что салиномицин в дозе 34-51 мг/кг массы животного является эффективным средством в борьбе с этой

Производственный опыт проводился в колхозе "Щучинский" Гродненской области. Для проведения опыта было подобрано 95 кроликов 1,54,0-месячного возраста, 54 кролика находились в контроле.

Перед началом опыта были проведены копроскопические исследования, в результате которых установлена 100% зараженность кроликов опытной и контрольной групп. Салиномицин применили животным в дозе 34 йг/кг массы 10-дневным курсом 2 раза в день с кормом. Затем были проведены контрольные копроскопические исследования, в результате было установлено отсутствие инвазированности кроликов опытной группы. У молодняка контрольной группы экстенсивность инвазии составляла 100%. В опытной группе падежа не было. В контрольной пало 19 кроликов.

Эффективность применения пижмы обыкновенной.

Применяли пижму обыкновенную в форме настоя (1:20). Для определения противоэймериозных свойств препарата подбирались три группы кроликов по 10 голов в каждой. При этом животные первой группы были контрольными, во второй получали 5 мл и третьей - 10 мл настоя пижмы на животное. Препарат назначали животным индивидуально, в утреннее кормление с концентратами в течение 14 дней.

Результаты копроскопических исследований показывают, что в начале опыта интенсивность эймериозной инвазии составляла 231,0-162,0 тыс. ооцист эймерий в 1 г фекалий. Снижение инвазии отмечено на пятый день применения препарата. На шестой и седьмой дни опыта также наблюдалось снижение инвазии у кроликов II и III групп, а в контрольной - рост.

Дальнейшее исследование показало, что эймериозная инвазия во II группе находилась в пределах 97,0-83,0 тыс. ооцист, в III - 72,0-63,5 тыс. ооцист в 1 г фекалий. У контрольных животных этот показатель был значительно выше и составлял 243,0-218,0 тыс. ооцист в 1 г фекалий. Эффективность применения хвойной муки.

Хвойная мука представляет собой измельченную хвою ели. Исследования проведены на 30 кроликах 3-5-месячного возраста, больных эймериозом. Животные были разделены на 3 группы, по 10 голов в каждой. Первая группа была контрольной. Кроликам II группы к корму добавляли хвойную муку в дозе 100 г на 1 кг корма, III группе - 200 г/кг корма.

На шестой день применения препарата установлено, что интенсивность инвазии во II группе снизилась на 47,5, а в III - на 40% по сравнению с контрольной.

В конце опыта у животных II группы количество ооцист эймерий было на 74,6%, а в III - на 69,7% меньше, чем у кроликов контрольной группы.

Профилактические свойства лизосубтилина ГЮх.

Изучение эффективности лизосубтилина ГЮх провели в клинике кафедры паразитологии Витебского ветииститута на трехмесячных крольчатах, разделенных на 3 группы, по 8 голов в каждой. При этом животные I группы были контрольными и препарат не получали, II - скармливали с кормом 20 мг лизосубтилина ГЮх, III - 30 мг/кг живой массы.

Результаты копроскопических исследований показали, что в начале опыта (перед введением препарата) эймериозная инвазия находилась на уровне 71,0-76,3 тыс. ооцист в 1 г фекалий. На шестой день в фекалиях кроликов контрольной группы наблюдался рост интенсивности инвазии (117,0 тыс.ооцист/г), а у животных, получавших лизосубтилин ГЮх, количество ооцист эймерий находилось на уровне 26,0-34,1 тыс/г. На десятый-четырнадцатый день у кроликов контрольной группы при исследовании обнаружено 121,0-375,2 тыс. ооцист эймерий в 1г фекалий, а у опытных животных их количество оставалось примерно на одном уровне.

Профилактические свойства лизоцима ГЗх.

Для изучения противоэймериозных свойств лизоцима были проведены опыты на трех группах кроликов 3-3,5-месячного возраста по 7 голов в каждой. Изучали противоэймериозные свойства лизоцима ГЗх, который в настоящее время широко используется как стимулятор роста и иммуностимулятор в животноводстве. Подбирались 3 группы животных-аналогов.

Первая группа была контрольной и препарат не получала. Второй -ежедневно, в утреннее кормление с кормом вводили лизоцим в дозе 50 ЕД, третьей -100 ЕД на кг живой массы.

Применение лизоцима ГЗх в дозе 50-100 ЕДкг живой массы позволяет профилактировать эймериоз кроликов. Препарат не нарушает морфологический и биохимический состав крови и значительно повышаетестественные защитные силы организма животных, о чем свидетельствует увеличение бактерицидной активности сыворотки крови, общего белка и его гамма-глобулиновой фракции.

Производственный опыт проводился в совхозе "Почаевичи" Чашникского района Витебской области на 3 группах кроликов 2-2,5-месячного возраста по 70 голов в каждой. Животные были спонтанно инвазированы эймериями. Лизоцим применялся животным в дозе 50 и 100 ЕД/кг в течение 20 дней. К концу опыта количество ооцист эймерий в опытных группах снизилось в 4,0-6,6 раза по сравнению с контролем. Среди контрольных животных один кролик пал.

Таким образом, производственный опыт подтвердил, что лизоцим ГЗх в гпп Р. л/кг обладает хорошими профилактическими свойствами при

Изучение дезинвазирующнх свойств дезонола.

Нами изучалось дезинвазирующее свойство дезонола (лизола санитарного марки дезонол для ветеринарных целей).

Исследования проводили с использованием ооцист эймерий кроликов. В бактериологические чашки помещали отмытые и находящиеся в фекалиях ооцисты эймерий кроликов и обрабатывали эмульсией дезонола, которую готовили в 1-100% концентрации при температуре от 20 до 100°С. Исследовали материал через каждые 2 часа, затем через 16, 20, 24 часа, через 3 суток и через 20 суток. Использование дезонола в 5% концентрации при температуре +70 С с экспозицией 2 часа приводило к100% гибели ооцист эймерий кроликов.

Для подтверждения эффективности дезонола провели дезинвазию помещения вивария Витебского ветинститута. Оценку качества дезинвазии проводили согласно методике "Инструкция по проведению ветеринарной дезинфекции, дезинвазии, дезинсекции и дератизации", утвержденной Главным Управлением ветеринарии МСХ СССР 8 декабря 1968г.

Наши нсследования позволяют заключить, что использование дезонола в 5% концентрации при 70°С вызывает 100% гибель ооцист эймерий кроликов. Оптимальная экспозиция - 2 часа.

ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ВЕТЕРИНАРНЫХ МЕРОПРИЯТИЙ ПРИ ЭЙМЕРИОЗЕ КРОЛИКОВ

Экономическая эффективность в расчете на 1 рубль затрат составила:

от применения салиномицина - 10,3 руб.; трихопола - 8,2 руб.; пижмы обыкновенной - 7,3руб.; хвойной муки - 3,4 руб.

Экономическая эффективность на рубль затрат от применения лизосубтилина Г10х составила 3,3 руб, лизоцима ГЗх -1,8 руб.

ВЫВОДЫ

1. Эймериоз кроликов распространён в хозяйствах Республики Беларусь повсеместно и причиняет кролиководству значительный экономический ущерб. Возбудителями этой болезни являются 8 видов рода Eimeria: E.perforans, Е. irresidua, Е. intestinalis, Е. media, Е. magna, Е. stiedae, Е. coecicola, Е. piriformis. Эймерии 3-х видов (Е. piriformis, Е. coecicola, E.media) выявлены нами впервые на территории Республики Беларусь и встречаются гораздо реже, чем остальные виды. (Ягусевич А.И., Медведская Т.В. и др., 1990).

2. Не установлены достоверные различия в экстенсивности и интенсивности эймериозной инвазии по сезонам года у кроликов при содержании их в

помещениях закрытого типа. Снижение инвазии происходит в зимний период года у кроликов, содержащихся в клетках на открытом воздухе. (Ятусевич А.И., Медведская Т.В. и др., 1990).

3. Эймериоз кроликов характеризуется острым, подострым и хроническим течением. Наблюдается общее угнетение, ухудшение аппетита, повышение температуры тела, истощение и высокая смертность молодняка (до 100%). Первые клинические признаки появляются у инвазированных животных на 4-5 день, а выделение ооцист начинается на 4-6 день после их заражения. (Ятусевич А.И., Медведская Т.В.,1990).

4. Эймериоз кроликов сопровождается повышением бактерицидной активности сыворотки крови (на 9,68-20,25%), уменьшением активности лизоцима (на 1,33-2,10%), повышением (ГУ),001) содержания сиаловых кислот, глюкозы и понижением уровня суммы иммуноглобулинов, количества холестерина и концентрации витамина С в крови животных. (Медведская Т.В., 1998).

5. С лечебной целью при эймериозе кроликов эффективными являются: трихопол в дозе 15-20 мг/кг (экстенсэффективность составляет 95-98%) и салиномицин в дозе 17-51 мг/кг живой массы (ЭЭ 80-98%). Введение в корм настоя пижмы обыкновенной (1:20) в дозе 5-10 мл на голову и хвойной муки в дозе 10-20% на кг сухого корма позволяет сиизить эймериозную инвазию ( ЭЭ 76-88% и 70-75% соответственно).

Для профилактики болезни можно применять лизоцим ГЗх - 50-100 ЕД/кг живой массы, лизосубтилин ГЮх - 20-30 мг/кг массы животного. Продолжительность применения 19 дней. (Ятусевич А.И., Медведская Т.В.,1988, 1990; Медведская Т.В., 1990; Ятусевич А.И., Медведская Т.В. и др., 1995).

6. С целью дезинвазии внешней среды при эймериозе кроликов эффективным является применение дезонола в виде горячей (70°С) 5% эмульсии, оптимальная экспозиция - 2 часа.( Фитотерапия при паразитозах животных ( учебно-методическое пособие). // Ятусевич А.И., Медведская Т.В. и-др., 1993).

7.Экономический эффект разработанных нами методов химиопрофилактики эймериоза кроликов путем применения предложенных препаратов в составе комбикорма составляет 1,8-10,3 руб. прибыли на каждый затраченный рубль (в ценах на 1.01.92 г.).

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

По результатам проведенных исследований разработана научно-обоснованный комплекс лечебно-профилактических мероприятий при эймериозе кроликов, в основу которого положены следующие разработки:

- Дополнение к "Наставлению по применению лизола санитарного марки "дезонол" для ветеринарных целей". Утверждено ГУВ Госагропрома СССР 22 августа 1987 г.

- Эффективность применения лизоцима ГЗх для профилактики эймериозов кроликов. Рекомендации областной научно-практической конференции. Витебск, 14-16 марта 1990 г.

- Рекомендации по борьбе с эймериозами и изоспорозами животных. Утверждены секцией паразитологии отделения ветеринарной медицины Российской с/х академий 8 декабря 1992 г.,(протокол №4).

- Фитотерапия при паразитозах животных (учебно-методическое пособие). Одобрено учебно-методическим советом ФГЖ Витебского ветинститута 23 декабря 1992 г.. г. Витебск, 1993 г.

- Применение лекарственных и кормовых растений при паразитарных болезнях животных. Рекомендации утверждены научно-техническим Советом МСХ и продовольствия Республики Беларусь 22 июля 1993 года, протокол №5.

- Рекомендации по применению пижмы обыкновенной (Tanacetum vulgare) при паразитозах животных. Утверждены вет. отделом Витебского областного комитета по сельскому хозяйству и продовольствию 7 июня 1995 года.

список

ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ

1. Ятусеаич А.И., Медведская Т.В. Трихопол - эффективное средство при кокцидиозе кроликов //Кролиководство и звероводство.-1988.-№4.-С.45.

2. Медведская Т.В. Эффективность применения лизоцима ГЗх для профилактики эймериоза кроликов. // Новое в профилактике и лечении с.-х. животных/. Рекомендации областной научно-практ. конф,- Витебск, 1990.-С.18.

3. Ятусевич А.И., Медведская Т.В. Профилактика эймериоза кроликов: инф. листок/ БелНИИНТИ,- Минск, 1990,- №292.-1990.-4с.

4. Ятусевич А.И., Медведская Т.В. Применение салиномицина при эймериозе кроликов // Профилактика и меры борьбы с болезнями молодняка с.-х. животных/ тез. докл. республ. конф.-Витебск,1990,- С. 187.

5. Ятусевич А.И., Герасимчик В.А., Медведская Т.В., Забудько В.А. Фауна эймериид пушных зверей и кроликов. // Профилактика и меры борьбы с болезнями молодняка с.-х. животных/ тез. докл. республ. конф.-Витебск,1990.- С.186.

6. Ятусевич А.И., Медведская Т.В. Методы профилактики эймериоза // Профилактика болезней молодняка с.-х. животных./тез. докл. всес. конф.-М.,

1991.- С.40-41.

7. Профилактика смешанных паразитозов //Ятусевич А.И., Герасимчик В.А., Забудько В.А., Медведская Т.В., Олехнович Н.И. и др./ мат. III всес. съезда паразитоценологов .-Киев, 1991.- С.188.

8. Рекомендации по борьбе с эймериозами и изоспорозами животных. // Степанова Н.И., Крылов М.В., Ятусевич А.И., Медведская Т.В. и др.- М.,

1992.- 39с.

9. Фитотерапия при паразитозах животных ( учебно-методическое пособие). // Ятусевич А.И., Никулин Т.Г., Карасев Н.Ф., Медведская Т.В. и др./ Витебск,

1993.-41С.

10. Применение лекарственных и кормовых растений при паразитарных болезнях животных (рекомендации).// Ятусевич А.И., Никулин Т.Г., Карасев" Н.Ф., Медведская Т.В. и др./ Утверждены техническим советом МСХ и продовольствия Республики Беларусь 22 июля 1993 года, протокол №5-Витебск, 1993,-45с.

11. Рекомендации по применению пижмы обыкновенной (Tanacetum vulgare) при паразитозах животных.// Ятусевич А.И., Карасев Н.Ф., Савченко В.Ф.,

^Медведская Т.В. и др.- Утверждены ветотделом Витебского областного комитета по сельскому хозяйству и продовольствию 7 июня 1995 года,-Витебск, 1995,- 9с.

12. Медведская Т.В. Влияние лизоцима ГЗх на интенсивность эймериозной инвазии и естественные защитные силы организма кроликов // НТИ и рынок,- 1998.-№6.- С.40.

17

РЕЗЮМЕ

Медведскап Тамара Вячеславовна

Эймериоз кроликов

(возбудители, эпизоотология, патогенез, терапия и профилактика)

Ключевые слова: кролик, эймериоз, инвазированность, патогенез, симптоматика, лечебные препараты, профилактика.

Объект исследования: кролики, инвазированные эймериями, фармакологические средства.

Цель работы: изыскание эффективных средств терапии и профилактики эймериоза кроликов.

Для достижения поставленной цели применяли паразитологические, клинические и биохимические методы исследований с использованием кроликов, ооцист эймерий и лечебно-профилактических препаратов.

Полученные результаты: в кролиководческих хозяйствах Республики Беларусь изучен видовой состав возбудителей эймериоза, уточнены их морфологические и биологические характеристики. Установлено, что в условиях республики основными видами эймерий являются: Е. perforans, Е. intestinalis, Е, irresidua, Е. magna, Е. media. Выяснены особенности эпизоотологии эймериоза кроликов в различных зонах Республики Беларусь. Изучены состояние естественной резистентности, иммунной реактивности организма кроликов при зй-мериозе, динамика содержания в крови животных глюкозы, холестерина, сиа-ловых кислот, витамина С.

Эффективными средствами для лечения и профилактики эймериоза являются: трихопол, салиномицин, пижма обыкновенная, лизосубтилин ГЮХ, лизоцим ГЗХ. Для дезинвазии внешней среды рекомендуется применять дезо-нол. Полученные результаты нашли применение в рекомендациях для сельскохозяйственного производства, которые используются в хозяйствах Республики Беларусь и в учебном процессе Витебской государственной академии ветеринарной медицины.

Диссертации о Земле http://earthpapers.net/eymerioz-krolikov-vozbuditeli-epizootologiya-patogenez-terapiya-i-profilaktika#ixzz42hJqDYWu

http://earthpapers.net/eymerioz-krolikov-vozbuditeli-epizootologiya-patogenez-terapiya-i-profilaktika

Эймериоз кроликов

Эймериоз кроликов - остро, подостро и хронически протекающая болезнь, вызываемая одноклеточными простейшими отряда Coccidiita. болезнь характеризуется анемичностью, иногда желтушностью слизистых оболочек, быстрым исхуданием, увеличением объема живота, диареей, судорогами и нередко массовой гибелью животных.

Эймериоз у кроликов является одной из самых распространенных заболеваний. При данном заболевании происходит повреждение кишечника и печени. Эймериозом могут болеть как взрослые так и молодые особи, но чаща молодняк до 4-5 месячного возраста, а гибель у них может достигать до 85-100%. Кролиководческие хозяйства несут значительные экономические потери которые включают в себя: затраты на лечение, профилактику, дезинфекцию. На почве этого заболевания кролики значительно отстают в развитии, снижается прирост живой массы, ухудшается качество продукции.

Характеристика возбудителя.

Тип: Apicomplexa

Класс: Sporozoa

Отряд: Coccidiita

Семейство: Eimeriita

Род: Eimeria

Вид: E. stietae

E. perforans. magna. intestinalis. metia и др.

Сейчас в нашей стране наиболее часто встречаются 3 вида:

E. stietae - величина 30-40 * 16-25 мкм. Оболочка двойная, гладкая. Споруляция длится 3-4 дня. Ооциста локализуется в эпителии желчных ходов. Ооциста овальной формы, желтовато-коричневого цвета. Зрелая ооциста содержит 4 споры (грушевидной формы), в которых формируются по 2 спорозоита.

E. perforans - величина 13,8-30,6 * 10,3-17,3мкм. Ооциста бесцветная, овальной или цилиндрической формы, оболочка двухконтурная, гладкая. Споруляция длится 1-2 дня. Локализуется в тонком кишечнике.

E. magna - величина 32-37*21-25мкм. Споруляция 3-4 дня. Ооцисты овальной формы, коричневого цвета. Локализуются в тонком кишечнике.

Эймериозом могут болеть как взрослые, так и молодые особи, но чаща молодняк до 4-5 месячного возраста. Наиболее тяжело переносят болезнь кролики в возрасте 20-60 дней. Крольчата могут заражаться с первых дней жизни, но пока они питаются молоком матери клинические признаки у них почти не проявляются.

Возбудитель имеет 3 стадии развития: мерогонии, гаметогонии, спорогонии. Причем стадии шизогонии и гаметогонии происходят в эпителии кишечника (E. stietae - в желчных протоках печени, а E. perforans - толстом кишечнике). А третья стадия происходит во внешней среде. Стадия мерогонии - это бесполое размножение, которое сопровождается образованием мерозоитов; гаметогонии - половой процесс, формируются ооцисты; спорогонии - образуются спорозоиты.

В ооцисте, которая вышла из организма естественным путем (с фекалиями) и при благоприятных условиях, происходит стадия спорогонии. При этом цитоплазма ооцисты уплотняется, принимая форму шара, и делится на 4 споробласта, в последствии вокруг которых образуется оболочка и они становятся спороцистами. Далее каждая спороциста делится на 2 спорозоита. Этот процесс длится от нескольких часов до нескольких суток. Ооциста с 8 спорозоитами считается инвазионными. Из таких ооцист, съеденных кроликами, в просвет кишечника выходят спорозоиты и проникают внутрь эпителиальных клеток кишечника. Внутри клетки спорозоит множественно делится, образуя многоядерную клетку меронт. Внутри меронта формируются удлиненной формы мерозоиты. после образования мерозоитов меронт распадается. Мерозоиты вновь проникают в здоровые эпителиальные клетки и формируют меронты второй генерации, затем третей. Бывает до 4-5 генераций. Мерозоиты последней генерации проникают в здоровые клетки и дают начало микро - и макрогаметоцитам. Микрогаметоциты путем многократного деления ядра образуют множество микрогамет с 2-3 жгутиками. Макрогаметоциты превращаются в крупные неподвижные женские особи - макрогаметы. Микрогаметы активно проникают в макрогаметы и образуют зиготы, которая покрывается оболочкой и становится ооцистой.

Эймериоз распространен повсеместно. Большинство взрослых кроликов являются носителями ооцист. Уже с 8 дневного возраста крольчата могут быть инвазированны эймериозом. При этом интенсивность инвазии находится в прямой зависимости от зараженности кормящих крольчих. Наибольшая инвазированность кроликов наблюдается поздней весной и осенью. В зимнее время ооцисты развиваются только у самок, поэтому у крольчат количество эймерий небольшое. Источником инвазии являются кормящие крольчихи, носители эймерий, а также больные и переболевшие кролики. Ооцисты могут распространятся грызунами, птицами, обслуживающим персоналом на обуви, одежде, предметах ухода. Интенсивность заражения молодняка находится в прямой зависимости от степени зараженности крольчих. На интенсивность инвазии влияют скученность, сырость, недоброкачественные корма и т. д.

Развитее болезни начинается с проникновения спорозоитов в эпителиальные клетки кишечника. Из-за мерогонии происходит массовое разрушение клеток эпителия. Об интенсивности развития заболевания можно судить по количеству выделенных ооцист во внешнюю среду. У больного животного ежедневно выделяется 6-680 млн. ооцист. Через поврежденную стенку кишечника может проникнуть патогенная микрофлора, что усугубит процесс. В крови уменьшается количество эритроцитов, гемоглобина, сахара и снижается резервная щелочность. Нарушается водный баланс, повышается вязкость крови. Изменяется белковый состав крови, снижается количество альбуминов, увеличивается содержание ? -, ? - и ? - глобулинов. Снижается активность фосфотазы в тонком кишечнике, нарушается процесс всасывания аминокислот, все это в совокупности ведет к задержке роста и развития организма. Патогенез свидетельствует о глубоких нарушениях в организме в целом, а не только в органе, где локализуется возбудитель.

Инкубационный период заболевания продолжается 4-10 дней. Заболевания проявляется остро, подостро или хронически. Эймериоз имеет несколько форм: кишечную, легочную и смешанную. В первые дни у больных животных наблюдается вялость, угнетение, они становятся малоподвижными, больше лежат, аппетит снижается, брюшина увеличивается в размерах, при пальпации болезненная, слизистые бледные. Наблюдается понос, нередко с примесью крови, полиурия. Больные животные отстают в росте и развитии. Они не реагируют на местные раздражители. Могут появляться параличи конечностей, судороги. Самки плохо оплодотворяются, дают малочисленные (по 2-3 крольчонка) и нежизнеспособные пометы. Выздоровевшие кролики долгое время выделяют ооцисты. кролик эймериоз патология лечение

У курируемого животного наблюдалось: небольшое увеличение объема живота, брюшная стенка была напряжена, аппетит был снижен. При дальнейшем лечении данные признаки исчезли.

Трупы животных истощены, слизистые оболочки анемичны и желтушны. Задняя часть тела загрязнена. Изменения наблюдались и в кишечнике (очаговые или диффузные, катаральные или геморрагические воспаления слизистой оболочки) и печени. Нередко выявляются белые тяжи в стенке кишечника. При паразитировании E. stietae наиболее характерные изменения в печени: она увеличена в размере, на поверхности видны беловатые, изолированные очаги, расположенные по ходу желчных проходов. Неистощенные тушки вынужденно убитых животных используются без ограничения, истощенные проверяются на сальмонеллез - при отрицательном результате реализуются.

При постановке диагноза по эймериозу у кроликов учитывают эпизоотологические данные болезни, клинические признаки, Патологоанатомические изменения.

Фекалии больных крольчат или содержимое кишечника павших животных исследуют по методам Дарлинга или Фюллеборна.

Мы проводили исследование по методу Дарлинга: брали 3,5 г свежих фекалий, растирали в ступке пестиков до получения однородной массы с десятикратным количеством воды. Получившуюся массу пропустили через металлическое сито в баночку Флоренского и дали отстоятся 5мин. После надосадочную жидкость слили, а осадок поместили в центрифужную пробирку и центрифугировали в течение 2мин при 1500 об/мин, снова слили надосадочную жидкость, а к осадку долили раствор Дардинга. Чистой стеклянной палочкой размешали смесь и повторно центрифугировали 2мин при 1500 об/мин. Далее гельминтологической петлей сняли с поверхности пленочку и поместили на предметное стекло, накрыли предметным стеклом и микроскопировали.

Исследовали фекалия 2 раза. До назначения курса лечения в 20 полях зрения микроскопа обнаружили 32 ооцисты эймерий. После начала применения химкокцида - 15.

Температура, пульс, дыхание, гематологические показатели в пределах физиологической нормы. Общее состояние кролика удовлетворительное, корм и воду принимает охотно. Из полученных результатов можно сделать вывод, что кролик является носителем ооцист эймерий.

При постановке диагноза эймериоз кролика следует исключить псевдотуберкулез, пастереллез, листериоз.

Возбудитель псевдотуберкулеза вызывает заражение кроликов через органы дыхания, пищеварительный тракт и при половом контакте, а при эймериозе - только алиментарный. К псевдотуберкулезу восприимчивы не только кролики, но и морские свинки, мыши, голуби, обезьяны. При псевдотуберкулезе отмечается септический процесс, увеличение лимфоузлов, чего не бывает при эймериозе. Патологоанатомические изменения при псевдотуберкулезе более резко выражены в селезенке, почках и лимфоузлах, а при эймериозе - в тонком кишечнике и в желчных протоках печени.

При пастереллезе заражение идет респираторным путем. Насморк, затруднено дыхание, а патологоанатомические изменения локализуются в органах брюшной и грудной полостях.

При листериозе заражение происходит при скармливании животным инфицированных кормов. Инфекция может передаваться иксодовыми клещами, блохами, вшами.

В борьбе с эймериозом кроликов хороший эффект дает применение раствора йода: самкам с 25-го дня беременности по 5 день лактации по 100 мл 0,1% раствора, далее до40 дня лактации - по 200-300мл; молодняку после отъема - по 50-70мл 0,2% раствора 15 дневным курсом. Раствор готовят перед применением, но его нельзя готовить в металлической посуде.

Применяют норсульфазол натрия по 0,4г/кг 0,5-1,0% раствора на воде по 2 раза в день. Сульфодиметоксин назначают с влажным кормом по 0,2г/кг в первый день, а в последующие 4 дня по 0,1г/кг. Фуразолидон 0,03г/кг 7-10дневным курсом 1-2 раза в день. Химкокцид-7 применяют по 200мг/кг внутрь с кормом, трихопол 15-20мг/кг и др.

Для лечения курируемого животного применяли химкокцид, который представляет собой мелкокристаллический порошок желтого цвета, без запаха и вкуса, нерастворимый в воде, кислотах и хлороформе. Препарат действует на шизонты 1-2 генерации и полностью задерживает развитие гамонтов.

Химкокцид применяли в дозе 20мл/кг с кормом 5 дневным курсом. Масса кролика 3кг, т.е. вводили в корм по 60мг препарата.

Комплекс мероприятий по профилактике эймериоза сводится к уничтожению эймерий во внешней среде и тем самым предупреждению их заглатывания крольчатами:

1.Для этого необходимо ежедневная очистка клеток и вольеров от фекалий.

2.Кроликов рекомендуется содержать в клетках с решетчатыми полами, кормушки и поилки необходимо ошпаривать кипятком.

.Молодых и старых животных нужно содержать отдельно, т.к. последние, являясь эймерионосителями, служат источником заражения молодняка.

.Животных необходимо обеспечить сбалансированными кормами.

.В помещении поддерживать необходимый микроклимат.

.Систематически проводить дератизацию и дезинфекцию.

.Инвентарь для уборки закрепляют за небольшой группой кормушек.

.Кормораздача должна производится только после очистки кормушек.

.Перед окролом самок их клетки и инвентарь тщательно очищают и дезинфицируют.

В период отъема молодняка от матери назначают химиопрофилактику:

I.Сульфадиметоксин - 0,1г и мономицин в дозе 2500 ЕД/кг с кормом 2-5 дневным курсом с интервалом 3 дня;

II.Норсульфазол 0,4г с мономицином 2500 ЕД/кг 2-5 дневным курсом с интервалом 3 дня;.Фуразолидон в дозе 0,02 г/кг с кормом по той же схеме.

После отъема крольчат переводят на обычный кормовой рацион постепенно.

Для дезинфекции помещений (1раз в 3 мес.) применяют кипяток, огонь паяльной лампы, карболово-керосиновую смесь (4% раствор карболовой кислоты, 10% раствор керосина, 5% раствор креалина, 81% воды) - по 0,5 л/м2

Выводы, заключения согласно собственных данных.

1)Эймериоз у кроликов широко распространен

2)Эймериоз приносит значительный экономический ущерб за счет падежа животных снижения упитанности, удлинения сроков откорма

)Для лечения использовали химкокцид. Уже после двукратного применения при исследовании фекалий количество ооцист эймерий уменьшилось вдвое. Курс следует повторить через 3 дня

)Необходимо соблюдение обслуживающим персоналом личной гигиены и ветеринарно-санитарных правил обслуживания животных.

Список использованной литературы

1.Абуладзе К.И.; Демидов Н.В. и др. Паразитология и инвазионные болезни сельскохозяйственных животных. - М.: Агропромиздат, 1990 г. - 490с.

2.Демина М.Ф., Гусев Б.А., Леонтюк С.В.- болезни кроликов. - М.: 1959г. - 230с.

.Ятусевич А.И., Карасев Н.Ф., Пенькевич В.А. - Паразитология и инвазионные болезни животных: Учебное пособие сред. спец. уч. заведений - Мн.: Дизайн ПРО, 2004г. - 240с.

.Ятусевич А.И. Протозойные заболевания сельскохозяйственных животных. - МН.: Урожай, 1993г. - 174с.